| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 周围神经系统的损伤与修复 | 第13-16页 |
| 1.2.1 周围神经系统损伤 | 第13-14页 |
| 1.2.2 周围神经再生 | 第14页 |
| 1.2.3 周围神经损伤的修复 | 第14-16页 |
| 1.3 高分子水凝胶 | 第16-17页 |
| 1.3.1 高分子材料 | 第16页 |
| 1.3.2 水凝胶 | 第16-17页 |
| 1.4 导电性材料及其应用 | 第17-19页 |
| 1.4.1 导电高分子材料 | 第17-18页 |
| 1.4.2 导电高分子材料的合成 | 第18-19页 |
| 1.4.3 导电高分子材料的应用 | 第19页 |
| 1.5 神经生长因子与周围神经再生 | 第19-21页 |
| 1.5.1 神经生长因子 | 第19-20页 |
| 1.5.2 神经生长因子在神经再生中的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.6 论文研究内容和创新点 | 第21-24页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第21-23页 |
| 1.6.2 创新点 | 第23-24页 |
| 第2章 SA/CMCS/PPy导电水凝胶的制备与表征 | 第24-48页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-30页 |
| 2.2.1 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.2 SA/CMCS水凝胶的制备 | 第26页 |
| 2.2.3 PPy的制备 | 第26页 |
| 2.2.4 SA/CMCS/PPy导电水凝胶的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.5 红外光谱检测 | 第27页 |
| 2.2.6 样品形貌的表征 | 第27页 |
| 2.2.7 凝胶化时间的测定 | 第27页 |
| 2.2.8 平衡水含量的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.9 溶胀度和孔隙率的测定 | 第28页 |
| 2.2.10 电化学性能和电导率的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.11 机械性能的测定 | 第29页 |
| 2.2.12 热学性能的测定 | 第29页 |
| 2.2.13 水凝胶降解行为的考察 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-46页 |
| 2.3.1 SA/CMCS/PPy导电水凝胶的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.2 红外光谱分析 | 第31-33页 |
| 2.3.3 水凝胶的形貌 | 第33-34页 |
| 2.3.4 水凝胶的凝胶化时间 | 第34-36页 |
| 2.3.5 水凝胶的平衡水含量 | 第36-39页 |
| 2.3.6 水凝胶的溶胀度和孔隙率 | 第39-40页 |
| 2.3.7 水凝胶的电导率和电化学特性 | 第40-42页 |
| 2.3.8 水凝胶的机械性能 | 第42-43页 |
| 2.3.9 水凝胶的热学性能 | 第43-45页 |
| 2.3.10 水凝胶的降解性 | 第45-46页 |
| 2.4 本章小结 | 第46-48页 |
| 第3章 SA/CMCS/PPy/NGF导电水凝胶的释药性能研究 | 第48-58页 |
| 3.1 引言 | 第48-49页 |
| 3.2 实验部分 | 第49-52页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器 | 第49-50页 |
| 3.2.2 SA/CMCS/NGF载药水凝胶的制备 | 第50页 |
| 3.2.3 SA/CMCS/PPy/NGF导电载药水凝胶的制备 | 第50页 |
| 3.2.4 载药水凝胶的体外释放 | 第50-52页 |
| 3.2.4.1 NGF标准曲线的制定和方法学考察 | 第50-51页 |
| 3.2.4.2 NGF体外释放量的测定 | 第51-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-56页 |
| 3.3.1 NGF标准曲线的制定和方法学考察 | 第52-54页 |
| 3.3.1.1 标准曲线 | 第52-53页 |
| 3.3.1.2 稳定性实验 | 第53页 |
| 3.3.1.3 精密度实验 | 第53-54页 |
| 3.3.1.4 回收率实验 | 第54页 |
| 3.3.2 载药水凝胶NGF的体外释放 | 第54-56页 |
| 3.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第4章 SA/CMCS/PPy/NGF导电载药水凝胶的体外细胞相容性研究 | 第58-69页 |
| 4.1 引言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验部分 | 第59-64页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.2 细胞的传代培养 | 第60-62页 |
| 4.2.3 水凝胶与PC12细胞共培养的荧光染色实验与SEM观察 | 第62-63页 |
| 4.2.4 水凝胶与RSC96细胞、BMMSC细胞共培养的荧光染色实验 | 第63-64页 |
| 4.3 结果与分析 | 第64-68页 |
| 4.3.1 水凝胶与PC12细胞共培养的荧光染色实验与SEM观察 | 第64-65页 |
| 4.3.2 水凝胶与RSC96细胞、BMMSC细胞共培养的荧光染色实验 | 第65-68页 |
| 4.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 第5章 SA/CMCS/PPy/NGF导电载药水凝胶的动物实验研究 | 第69-89页 |
| 5.1 引言 | 第69-70页 |
| 5.2 实验部分 | 第70-74页 |
| 5.2.1 主要实验器材与试剂 | 第70页 |
| 5.2.2 实验动物分组 | 第70-71页 |
| 5.2.2.1 炎症反应实验 | 第70-71页 |
| 5.2.2.2 神经缺损再生实验 | 第71页 |
| 5.2.3 材料制备 | 第71页 |
| 5.2.4 手术过程 | 第71-72页 |
| 5.2.4.1 炎症反应实验 | 第71-72页 |
| 5.2.4.2 神经缺损再生实验 | 第72页 |
| 5.2.5 体内生物相容性分析 | 第72页 |
| 5.2.6 神经缺损再生实验的评价 | 第72-74页 |
| 5.2.6.1 步态分析 | 第72-73页 |
| 5.2.6.2 腓肠肌测重及形态染色 | 第73页 |
| 5.2.6.3 神经组织学评价 | 第73-74页 |
| 5.3 结果与分析 | 第74-88页 |
| 5.3.1 体内炎症反应 | 第74-75页 |
| 5.3.2 神经缺损再生实验的评价 | 第75-88页 |
| 5.3.2.1 神经缺损再生实验的手术全过程 | 第75-76页 |
| 5.3.2.2 步态分析 | 第76-79页 |
| 5.3.2.3 腓肠肌失重恢复率及组织学分析 | 第79-83页 |
| 5.3.2.4 神经组织学分析 | 第83-88页 |
| 5.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 第6章 结论及展望 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-100页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及专利 | 第100页 |
