| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-21页 |
| 第一章 JAK-STAT信号通路相关基因克隆与生物信息学分析 | 第21-55页 |
| 1.材料 | 第22-24页 |
| 1.1 试验动物、载体、菌株 | 第22页 |
| 1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 1.3 主要仪器 | 第23页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第23-24页 |
| 2.方法 | 第24-28页 |
| 2.1 JAK2、STA3、SOCS1基因的扩增 | 第24-25页 |
| 2.2 JAK2、STAT3和SOCS1基因克隆及鉴定 | 第25-27页 |
| 2.3 三穗麻鸭JAK2、STAT3和SOCS1基因生物信息学分析 | 第27-28页 |
| 3.结果 | 第28-52页 |
| 3.1 三穗麻鸭JAK2基因克隆与生物信息学分析 | 第28-37页 |
| 3.2 三穗麻鸭STAT3基因克隆与生物信息学分析 | 第37-46页 |
| 3.3 三穗麻鸭SOCS1基因克隆与生物信息学分析 | 第46-52页 |
| 4.讨论 | 第52-55页 |
| 4.1 JAK2基因克隆结果分析 | 第52页 |
| 4.2 STAT3基因克隆结果分析 | 第52-53页 |
| 4.3 关于SOCS1基因结果克隆 | 第53-55页 |
| 第二章 DEV感染后鸭机体组织JAK-STAT信号通路相关基因的转录变化 | 第55-106页 |
| 1.材料 | 第55-57页 |
| 1.1 试验动物、载体、菌株 | 第55页 |
| 1.2 主要试剂 | 第55-56页 |
| 1.3 主要仪器 | 第56页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第56-57页 |
| 2.方法 | 第57-60页 |
| 2.1 引物的设计与合成 | 第57页 |
| 2.2 DEV的接种与增殖 | 第57页 |
| 2.3 病毒PCR检测 | 第57-58页 |
| 2.4 组织总RNA提取 | 第58-59页 |
| 2.5 逆转录合成cDNA | 第59页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR反应 | 第59-60页 |
| 3.结果 | 第60-104页 |
| 3.1 病毒PCR检测结果 | 第60-62页 |
| 3.2 荧光定量PCR标准曲线建立结果 | 第62-73页 |
| 3.3 JAK-STAT信号通路相关基因的组织转录谱 | 第73-104页 |
| 4.讨论 | 第104-106页 |
| 4.1 JAK2基因转录水平的变化分析 | 第104页 |
| 4.2 STAT3基因转录水平的变化分析 | 第104页 |
| 4.3 SOCS1基因转录水平的变化分析 | 第104-106页 |
| 第三章 DEV感染后鸭机体组织JAK-STAT信号通路相关蛋白的表达变化 | 第106-142页 |
| 1.材料 | 第107页 |
| 1.1 实验动物 | 第107页 |
| 1.2 主要试剂 | 第107页 |
| 1.3 主要仪器 | 第107页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第107页 |
| 2.方法 | 第107-109页 |
| 2.1 样品的采集 | 第107-108页 |
| 2.2 JAK2、STAT3和SOCS1蛋白水平的检测 | 第108-109页 |
| 2.3 数据统计分析 | 第109页 |
| 3.结果 | 第109-140页 |
| 3.1 DEV感染后鸭机体组织JAK2蛋白的表达变化结果 | 第109-119页 |
| 3.2 DEV感染后鸭机体组织STAT3蛋白的表达变化结果 | 第119-129页 |
| 3.3 DEV感染后鸭机体组织SOCS1蛋白的表达变化结果 | 第129-140页 |
| 4.讨论 | 第140-142页 |
| 4.1 JAK2蛋白表达水平的变化分析 | 第140页 |
| 4.2 STAT蛋白表达水平的变化分析 | 第140-141页 |
| 4.3 SOCS1蛋白表达水平的变化分析 | 第141-142页 |
| 全文结论 | 第142-143页 |
| 参考文献 | 第143-153页 |
| 致谢 | 第153-154页 |
| 附录 | 第154-155页 |
