中文摘要 | 第4-8页 |
abstract | 第8-11页 |
中英文缩写词对照表 | 第15-16页 |
第一篇 前言 | 第16-18页 |
第二篇 文献综述 | 第18-36页 |
第一章 骨与骨重建 | 第18-26页 |
1.1 概述 | 第18-19页 |
1.2 骨组织细胞 | 第19-23页 |
1.2.1 成骨细胞 | 第19-20页 |
1.2.2 破骨细胞 | 第20-22页 |
1.2.3 骨细胞 | 第22-23页 |
1.3 骨的生理性重建 | 第23-26页 |
第二章 氟元素及氟骨症研究进展 | 第26-30页 |
2.1 氟元素及生理功能概述 | 第26-27页 |
2.1.1 氟在人体的吸收、分布及代谢 | 第26页 |
2.1.2 氟对人体的作用 | 第26-27页 |
2.2 氟骨症的研究进展 | 第27-30页 |
2.2.1 地方性氟中毒 | 第27-28页 |
2.2.2 氟骨症概述 | 第28页 |
2.2.3 氟骨症的发病机制研究 | 第28-29页 |
2.2.4 氟骨症与甲状旁腺激素(PTH) | 第29-30页 |
第三章 甲状旁腺激素(PTH)及其受体信号通路 | 第30-34页 |
3.1 甲状旁腺激素(PTH)概述 | 第30页 |
3.2 PTH对骨骼系统作用 | 第30-34页 |
3.2.1 PTH与成骨细胞 | 第30-32页 |
3.2.2 PTH与破骨细胞 | 第32-33页 |
3.2.3 PTH与骨细胞 | 第33-34页 |
第四章 研究设想及意义 | 第34-36页 |
第三篇 实验研究 | 第36-72页 |
第一章 染氟小鼠原代骨细胞体外实验研究 | 第36-58页 |
1.1 实验材料 | 第36-38页 |
1.1.1 实验细胞株及动物 | 第36页 |
1.1.2 实验仪器 | 第36-37页 |
1.1.3 实验试剂 | 第37-38页 |
1.1.4 器械耗材 | 第38页 |
1.2 实验方法 | 第38-48页 |
1.2.1 原代骨细胞的分离及培养 | 第38-39页 |
1.2.2 MTT法检测原代骨细胞增殖活性 | 第39-40页 |
1.2.3 免疫组织化学检测原代骨细胞内E11/gp38及OCN表达 | 第40-41页 |
1.2.4 原代骨细胞与RAW264.7细胞共培养 | 第41-42页 |
1.2.5 实时定量PCR检测氟及PTH作用下原代骨细胞中基因的表达 | 第42-44页 |
1.2.6 Western Blot检测氟及PTH作用下原代骨细胞中相关蛋白的表达 | 第44-47页 |
1.2.7 统计学处理 | 第47-48页 |
1.3 实验结果 | 第48-55页 |
1.3.1 原代骨细胞的形态和免疫组织化学鉴定 | 第48页 |
1.3.2 MTT法检测原代骨细胞体外增殖活性 | 第48-49页 |
1.3.3 骨细胞与RAW264.7共培养观察骨细胞染氟联合PTH对破骨细胞分化的影响 | 第49-50页 |
1.3.4 染氟及PTH作用下原代骨细胞内Sost,RANKL以及OPG基因表达 | 第50-51页 |
1.3.5 染氟及PTH作用下原代骨细胞内PTH1R及Wnt通路相关基因表达 | 第51-53页 |
1.3.6 染氟及PTH作用下原代骨细胞内相关因子的蛋白表达 | 第53-55页 |
1.4 小结 | 第55-58页 |
第二章 氟骨症动物模型实验 | 第58-72页 |
2.1 实验材料 | 第58-59页 |
2.1.1 实验动物 | 第58页 |
2.1.2 实验仪器 | 第58-59页 |
2.1.3 实验试剂 | 第59页 |
2.1.4 器械耗材 | 第59页 |
2.2 实验方法 | 第59-62页 |
2.2.1 氟骨症动物模型制备 | 第59-60页 |
2.2.2 大鼠骨密度检测 | 第60页 |
2.2.3 大鼠血清ELISA检测 | 第60页 |
2.2.4 大鼠骨组实时定量PCR | 第60-62页 |
2.2.5 统计学处理 | 第62页 |
2.3 实验结果 | 第62-69页 |
2.3.1 造模大鼠的基本特征 | 第62-64页 |
2.3.2 大鼠骨密度检测 | 第64-65页 |
2.3.3 大鼠血清ELISA检测 | 第65-66页 |
2.3.4 大鼠股骨基因实时定量PCR检测 | 第66-69页 |
2.4 小结 | 第69-72页 |
第四篇 讨论和结论 | 第72-78页 |
第五篇 课题创新性 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-94页 |
作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第94-95页 |
致谢 | 第95页 |