| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-34页 |
| 1.1 植物响应干旱胁迫反应的机制 | 第12-21页 |
| 1.1.1 干旱对植物的伤害 | 第12-13页 |
| 1.1.2 植物响应干旱胁迫的生理机制 | 第13-14页 |
| 1.1.3 植物响应干旱胁迫的分子机制 | 第14-16页 |
| 1.1.4 植物响应干旱胁迫的信号通路 | 第16-21页 |
| 1.2 保卫细胞和植物激素ABA在植物抗旱中的作用 | 第21-27页 |
| 1.2.1 保卫细胞ABA信号转导途径 | 第21-25页 |
| 1.2.2 干旱胁迫中植物激素ABA的代谢平衡 | 第25-27页 |
| 1.3 拟南芥bZIP类转录因子的研究进展 | 第27-33页 |
| 1.3.1 拟南芥bZIP类转录因子的结构特征与分类 | 第27-28页 |
| 1.3.2 拟南芥bZIP类转录因子的功能研究进展 | 第28-33页 |
| 1.4 本研究工作的目的与意义 | 第33-34页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第34-61页 |
| 2.1 实验材料 | 第34-37页 |
| 2.1.1 拟南芥材料 | 第34页 |
| 2.1.2 本论文中所用引物序列 | 第34-36页 |
| 2.1.3 实验中所用菌株及载体 | 第36页 |
| 2.1.4 实验常用试剂和设备 | 第36-37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-61页 |
| 2.2.1 拟南芥培养方法 | 第37-38页 |
| 2.2.2 土壤干旱实验 | 第38页 |
| 2.2.3 离体叶片失水实验 | 第38页 |
| 2.2.4 气孔开度实验 | 第38-39页 |
| 2.2.5 植物幼苗根长及侧根数目统计 | 第39页 |
| 2.2.6 拟南芥转基因材料的筛选 | 第39-40页 |
| 2.2.7 拟南芥T-DNA插入突变体材料的鉴定 | 第40-41页 |
| 2.2.8 拟南芥杂交材料的鉴定 | 第41页 |
| 2.2.9 目的基因克隆与构建 | 第41-46页 |
| 2.2.10 植物总RNA的提取、反转录、RT-PCR以及real-time PCR | 第46-49页 |
| 2.2.11 蛋白表达纯化、SDS-PAGE以及Western blot实验 | 第49-53页 |
| 2.2.12 凝胶迁移实验(EMSA) | 第53-55页 |
| 2.2.13 染色质免疫共沉淀实验(ChIP) | 第55-58页 |
| 2.2.14 烟草叶片瞬时表达外源蛋白及GUS酶活性测定 | 第58-60页 |
| 2.2.15 植物叶绿素含量测定 | 第60页 |
| 2.2.16 GUS染色分析 | 第60-61页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第61-89页 |
| 3.1 TGA7是典型的bZIP转录因子 | 第61-63页 |
| 3.1.1 TGA7氨基酸序列分析 | 第61页 |
| 3.1.2 TGA7具备转录因子特性 | 第61-63页 |
| 3.2 TGA7组织表达分析 | 第63-64页 |
| 3.3 TGA7参与植物响应干旱胁迫的实验证据 | 第64-70页 |
| 3.3.1 tga7突变体和回补材料的鉴定 | 第64-65页 |
| 3.3.2 tga7突变体和回补材料干旱表型检测 | 第65-66页 |
| 3.3.3 TGA7过量表达材料干旱表型检测 | 第66-68页 |
| 3.3.4 ABA对tga7突变体和TGA7过量表达材料气孔运动的影响 | 第68-70页 |
| 3.4 TGA7调控植物体内ABA含量的变化 | 第70页 |
| 3.5 转录因子TGA7负向调控β-葡糖苷酶基因BG1的表达 | 第70-76页 |
| 3.5.1 转录因子TGA7抑制BG1的表达 | 第70-73页 |
| 3.5.2 转录因子TGA7直接结合BG1启动子 | 第73-76页 |
| 3.6 bg1突变体干旱表型检测 | 第76-77页 |
| 3.7 TGA7位于BG1上游的遗传证据 | 第77-83页 |
| 3.7.1 tga7 bg1双突变体植株干旱表型检测 | 第77-78页 |
| 3.7.2 ABA对tga7 bg1双突变体植株气孔运动的影响 | 第78-80页 |
| 3.7.3 TGA7OE BG1OE双过量表达材料干旱表型检测 | 第80-82页 |
| 3.7.4 ABA对TGA7OE BG1OE双过量表达材料气孔运动的影响 | 第82-83页 |
| 3.8 TGA7在干旱胁迫条件下的表达变化 | 第83-86页 |
| 3.8.1 TGA7转录水平在干旱胁迫下的表达量变化 | 第83-84页 |
| 3.8.2 TGA7蛋白在干旱胁迫条件下的表达量变化 | 第84-86页 |
| 3.9 TGA8参与植物响应干旱胁迫的初步探究 | 第86-89页 |
| 3.9.1 TGA8在tga7突变体中的表达量升高 | 第86页 |
| 3.9.2 tga8突变体的鉴定 | 第86-87页 |
| 3.9.3 tga7 tga8双突变体的干旱表型检测 | 第87-89页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第89-95页 |
| 4.1 TGA7是植物响应干旱胁迫的重要调控因子 | 第89页 |
| 4.2 TGA7通过负向调控BG1的表达来响应干旱胁迫 | 第89-91页 |
| 4.3 TGA7转录水平和蛋白水平的表达受干旱胁迫的诱导不同 | 第91页 |
| 4.4 TGA7参与植物生长发育过程 | 第91-95页 |
| 第五章 结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-117页 |
| 附录 (TGA7参与生长素调控植物根生长发育的机制研究) | 第117-128页 |
| 1.1 引言 | 第117-119页 |
| 1.1.1 生长素的合成与代谢途径 | 第117-118页 |
| 1.1.2 生长素的极性运输 | 第118页 |
| 1.1.3 生长素的信号转导途径 | 第118-119页 |
| 1.2 实验结果与分析 | 第119-126页 |
| 1.2.1 TGA7相关材料根部表型检测 | 第119-121页 |
| 1.2.2 tga7突变体和TGA7过量表达材料受生长素处理后的根部表型检测 | 第121-123页 |
| 1.2.3 TGA7受IAA诱导表达 | 第123-125页 |
| 1.2.4 tga7突变体和TGA7过量表达材料中根尖生长素的分布情况检测 | 第125-126页 |
| 1.3 讨论 | 第126-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
| 个人简历 | 第129页 |
