| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 专用术语注释表 | 第11-12页 |
| 第一章 磷光光敏剂在肿瘤乏氧成像与光动力治疗中的研究进展 | 第12-42页 |
| 1.1 肿瘤的乏氧成像与光动力治疗 | 第12-23页 |
| 1.1.1 肿瘤的乏氧检测 | 第13-20页 |
| 1.1.1.1 侵入式乏氧检测 | 第14页 |
| 1.1.1.2 非侵入式乏氧检测 | 第14-20页 |
| 1.1.2 光动力治疗研究 | 第20-23页 |
| 1.1.2.1 光动力治疗机理 | 第20-21页 |
| 1.1.2.2 光动力治疗光敏剂 | 第21-23页 |
| 1.2 基于磷光光敏剂的乏氧成像和光动力治疗机理 | 第23-25页 |
| 1.2.1 磷光光敏剂的结构与性质 | 第23-24页 |
| 1.2.2 磷光光敏剂的乏氧成像和光动力治疗机理 | 第24-25页 |
| 1.3 用于肿瘤乏氧成像和光动力治疗的磷光光敏剂的研究进展 | 第25-32页 |
| 1.3.1 金属卟啉 | 第25-28页 |
| 1.3.2 钌(Ⅱ)配合物 | 第28-30页 |
| 1.3.3 铱(Ⅲ)配合物 | 第30-32页 |
| 1.4 研究思路 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-42页 |
| 第二章 基于时间分辨和上转换发光的的纳米复合体系的构建与乏氧成像研究 | 第42-76页 |
| 2.1 引言 | 第42-45页 |
| 2.2 实验部分 | 第45-52页 |
| 2.2.1 试剂和药品 | 第45-46页 |
| 2.2.2 实验仪器及方法 | 第46-47页 |
| 2.2.3 乏氧纳米探针的合成 | 第47-50页 |
| 2.2.3.1 铱(Ⅲ)配合物的合成 | 第47-49页 |
| 2.2.3.2 UCNPs的合成 | 第49页 |
| 2.2.3.3 Core-ShellUCNPs@mSiO_2的合成 | 第49-50页 |
| 2.2.3.4 Core-ShellUCNPs@mSiO_2-Ir的合成 | 第50页 |
| 2.2.4 细胞培养 | 第50-51页 |
| 2.2.5 细胞毒性 | 第51页 |
| 2.2.6 细胞成像 | 第51-52页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第52-72页 |
| 2.3.1 纳米探针core-shellUCNPs@mSiO_2-Ir的合成与表征 | 第52-56页 |
| 2.3.2 铱(Ⅲ)配合物的光物理性质表征 | 第56-58页 |
| 2.3.3 UCNPs的光物理性质表征 | 第58-59页 |
| 2.3.4 铱(Ⅲ)配合物修饰的上转换纳米乏氧探针的设计原理 | 第59-60页 |
| 2.3.5 纳米探针在上转换通道的氧气检测性能表征 | 第60-62页 |
| 2.3.6 纳米探针的能量传递过程研究 | 第62-64页 |
| 2.3.7 纳米探针在下转换通道的氧气检测性能表征 | 第64-66页 |
| 2.3.8 纳米探针的细胞毒性、进细胞机理、细胞选择性以及在细胞中的分布研究 | 第66-69页 |
| 2.3.9 纳米探针在活细胞中的乏氧成像研究 | 第69-72页 |
| 2.4 本章小结 | 第72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 第三章 细胞器靶向的磷光光敏剂在乏氧环境中的光动力治疗研究 | 第76-116页 |
| 3.1 引言 | 第76-78页 |
| 3.2 实验部分 | 第78-87页 |
| 3.2.1 试剂和药品 | 第78页 |
| 3.2.2 实验仪器及方法 | 第78-80页 |
| 3.2.3 Ir-P(ph)3和Ir-alkyl的合成 | 第80-83页 |
| 3.2.4 细胞培养 | 第83页 |
| 3.2.5 细胞暗毒性 | 第83-84页 |
| 3.2.6 共染实验 | 第84页 |
| 3.2.7 细胞摄取机理研究 | 第84页 |
| 3.2.8 细胞乏氧成像 | 第84-85页 |
| 3.2.9 细胞内氧分压的测量 | 第85页 |
| 3.2.10 单线态氧量子效率(Φ_?)的测量 | 第85页 |
| 3.2.11 活性氧(ROS)的检测 | 第85-86页 |
| 3.2.12 线粒体膜电位(mitochondrialmembranepotential,MMP)分析 | 第86页 |
| 3.2.13 细胞凋亡实验(AnnexinV/PIassay) | 第86-87页 |
| 3.2.14 乏氧条件下PDT细胞毒性研究 | 第87页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第87-113页 |
| 3.3.1 光物理性质表征 | 第87-92页 |
| 3.3.2 细胞暗毒性测试 | 第92页 |
| 3.3.3 细胞共定位实验 | 第92-95页 |
| 3.3.4 光稳定性测试 | 第95-97页 |
| 3.3.5 细胞摄入机理研究 | 第97-98页 |
| 3.3.6 细胞器乏氧成像 | 第98-100页 |
| 3.3.7 活细胞细胞器中氧气浓度的定量测量 | 第100-102页 |
| 3.3.8 Ir-P(ph)3和Ir-alkyl对细胞有氧呼吸的影响研究 | 第102-103页 |
| 3.3.9 乏氧环境下的PDT细胞凋亡实验 | 第103-106页 |
| 3.3.10 乏氧环境下的PDT活性氧检测实验 | 第106-110页 |
| 3.3.11 乏氧环境下PDT导致线粒体膜电位(MMP)变化研究 | 第110-112页 |
| 3.3.12 乏氧环境下PDT细胞存活率实验 | 第112-113页 |
| 3.4 本章小结 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-116页 |
| 第四章 新型单线态氧载体的制备及其光动力治疗研究 | 第116-143页 |
| 4.1 引言 | 第116-117页 |
| 4.2 实验部分 | 第117-126页 |
| 4.2.1 试剂和药品 | 第117-118页 |
| 4.2.2 实验仪器及方法 | 第118-120页 |
| 4.2.3 单线态氧载体聚合物的合成 | 第120-124页 |
| 4.2.3.1 聚合物单体的合成 | 第120-122页 |
| 4.2.3.2 聚合物的合成 | 第122-124页 |
| 4.2.4 PEG修饰的金纳米棒(AuNRs@PEG)的合成 | 第124页 |
| 4.2.5 聚合物负载单线态氧的过程 | 第124页 |
| 4.2.6 细胞培养 | 第124-125页 |
| 4.2.7 细胞毒性 | 第125页 |
| 4.2.8 细胞成像 | 第125页 |
| 4.2.9 活性氧检测 | 第125-126页 |
| 4.2.10 细胞凋亡实验 | 第126页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第126-141页 |
| 4.3.1 单体的光物理性质表征 | 第126-128页 |
| 4.3.2 AuNRs@PEG的形貌和性能表征 | 第128-129页 |
| 4.3.3 单线态载体聚合物的结构表征 | 第129-130页 |
| 4.3.4 单线态载体聚合物的光物理性质表征 | 第130-131页 |
| 4.3.5 单线态载体聚合物热释放~1O_2的性能表征 | 第131-133页 |
| 4.3.6 光热性能表征 | 第133-134页 |
| 4.3.7 近红外光激发单线态载体聚合物释放单线态氧的性能表征 | 第134-135页 |
| 4.3.8 细胞毒性测试 | 第135-136页 |
| 4.3.9 细胞成像实验 | 第136页 |
| 4.3.10 活性氧实验 | 第136-137页 |
| 4.3.11 细胞凋亡实验 | 第137-139页 |
| 4.3.12 乏氧环境下的细胞凋亡实验 | 第139-141页 |
| 4.4 本章小结 | 第141页 |
| 参考文献 | 第141-143页 |
| 第五章 总结与展望 | 第143-146页 |
| 附录1 攻读博士学位期间论文发表情况 | 第146-148页 |
| 附录2 攻读博士学位期间申请的专利 | 第148-149页 |
| 附录3 攻读博士学位期间参加的科研项目 | 第149-150页 |
| 致谢 | 第150-151页 |
