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基于脂质和聚合物的纳米粒子作为药物载体的性能研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
第一章 绪论第17-55页
    1.1 癌症治疗现状第17页
    1.2 被动靶向和主动靶向第17-19页
        1.2.1 被动靶向第17-18页
        1.2.2 主动靶向第18-19页
    1.3 纳米药物载体的分类及其在癌症治疗中的应用第19-27页
        1.3.1 脂质体第20-22页
        1.3.2 白蛋白纳米颗粒第22页
        1.3.3 聚合物纳米粒子第22-23页
        1.3.4 树状大分子第23-24页
        1.3.5 无机纳米粒子第24-25页
        1.3.6 病毒纳米粒子第25-26页
        1.3.7 脂质-聚合物杂化纳米粒子第26-27页
    1.4 靶向纳米载体第27-30页
        1.4.1 肝靶向脂质体用于抗癌药物的输送第28-29页
        1.4.2 线粒体靶向脂质体用于抗癌药物的输送第29-30页
    1.5 刺激响应性纳米颗粒在药物输送领域的研究第30-36页
        1.5.1 还原敏感性聚合物纳米粒子用于抗癌药物的输送第32-35页
        1.5.2 表面PEG密度对纳米颗粒体内外细胞摄取的影响第35-36页
    1.6 选题思路第36-38页
    参考文献第38-55页
第二章 长循环阴离子脂质体用于抗肿瘤药物顺铂的肝靶向输送第55-81页
    2.1 前言第55-57页
    2.2 实验部分第57-63页
        2.2.1 实验试剂和材料第57页
        2.2.2 聚乙二醇衍生物的合成第57-58页
            2.2.2.1 聚乙二醇单甲醚-硬脂酸(MPEG-ST)的合成第57-58页
            2.2.2.2 聚合物乙酰甘草次酸-聚乙二醇-硬脂酸(AGA-PEG-ST)的合成第58页
        2.2.3 产物的表征第58-59页
            2.2.3.1 红外光谱(FTIR)表征第58页
            2.2.3.2 核磁共振氢谱(~1H NMR)表征第58-59页
        2.2.4 脂质体和载药脂质体的制备第59页
        2.2.5 脂质体的表征第59-60页
            2.2.5.1 脂质体和CDDP脂质体的粒径和粒径分布的测定第59页
            2.2.5.2 脂质体和CDDP脂质体的稳定性测定第59-60页
            2.2.5.3 脂质体的形貌表征第60页
        2.2.6 顺铂脂质体的包封率和载药量的测定第60页
        2.2.7 顺铂的稳定性实验第60-61页
        2.2.8 CDDP脂质体的体外释药研究第61页
        2.2.9 脂质体的体外细胞毒性实验第61-62页
        2.2.10 共聚焦荧光显微镜观察细胞对载药脂质体的摄取第62页
        2.2.11 流式细胞仪检测体外细胞对载药脂质体的内吞第62页
        2.2.12 体内组织分布研究第62-63页
    2.3. 结果与讨论第63-77页
        2.3.1 聚合物MPEG-ST(A)and AGA-PEG-ST(B)的合成第63页
        2.3.2 聚合物的表征第63-66页
        2.3.3 顺铂的储存稳定性第66-67页
        2.3.4 脂质体的粒径和电势电位检测第67-68页
        2.3.5 脂质体的稳定性研究第68-69页
        2.3.6 脂质体的形貌观察第69-70页
        2.3.7 脂质体的包封率和载药量第70页
        2.3.8 顺铂脂质体的体外释药实验第70-71页
        2.3.9 脂质体的细胞毒性第71-74页
        2.3.10 细胞对脂质体的摄取第74-75页
        2.3.11 流式细胞术研究细胞对脂质体的内吞第75页
        2.3.12 脂质体的体内组织分布第75-77页
    2.4 结论第77页
    参考文献第77-81页
第三章 三苯基膦修饰的脂质体用于抗癌药物顺铂的线粒体靶向输送第81-101页
    3.1 前言第81-82页
    3.2 实验部分第82-86页
        3.2.1 实验材料第82-83页
        3.2.2 聚合物的合成第83页
            3.2.2.1 聚合物CHO-FITC的合成第83页
            3.2.2.2 聚合物ST-PEG-TPP的合成第83页
        3.2.3 产物的表征第83-84页
        3.2.4 脂质体和载药脂质体的制备和表征第84页
            3.2.4.1 脂质体的制备第84页
            3.2.4.2 脂质体的表征第84页
        3.2.5 包封率和载药量第84页
        3.2.6 CDDP脂质体的体外释药第84-85页
        3.2.7 细胞毒性实验第85页
        3.2.8 线粒体靶向-CLSM观察线粒体的共定位第85-86页
        3.2.9 流式细胞仪检测细胞凋亡第86页
    3.3 结果与讨论第86-97页
        3.3.1 聚合物的合成与表征第86-90页
        3.3.2 脂质体制备和表征第90-91页
            3.3.2.1 脂质体的制备第90页
            3.3.2.2 DLS检测第90-91页
        3.3.3 脂质体的包封率和载药量第91-92页
        3.3.4 脂质体的形貌观察第92-93页
        3.3.5 顺铂脂质体的体外释药行为第93页
        3.3.6 细胞毒性实验第93-94页
        3.3.7 CLSM观察TPP脂质体与线粒体的共定位第94-95页
        3.3.8 FCM检测细胞凋亡第95-97页
    3.4 结论第97页
    参考文献第97-101页
第四章 肝靶向还原敏感脂质-聚合物杂化纳米颗粒用于阿霉素的靶向输送以及胞内还原触发释放第101-120页
    4.1 引言第101-102页
    4.2 实验部分第102-107页
        4.2.1 实验材料第102-103页
        4.2.2 PEG聚合物衍生物的合成第103-104页
            4.2.2.1 C_(16)-S-S-PEG-NH_2和C_(16)-C-C-PEG-NH_2的合成第103-104页
            4.2.2.2 聚合物C_(16)-S-S-PEG-AGA和C_(16)-C-C-PEG-AGA的合成第104页
        4.2.3 产物的~1H NMR表征第104页
        4.2.4 LPNPs和载药LPNPs的制备第104-105页
        4.2.5 荧光光谱仪测定LPNPs的载药量第105页
        4.2.6 LPNPs的表征第105页
        4.2.7 DOX/AGA-SS-LPNPs的还原响应性测定第105页
        4.2.8 载药LPNPs的体外释药行为第105-106页
        4.2.9 LPNPs和载药LPNPs的细胞毒性第106页
        4.2.10 CLSM观察细胞对载药LPNPs的摄取第106页
        4.2.11 FCM考察细胞对载药LPNPs的摄取第106-107页
    4.3 结果与讨论第107-116页
        4.3.1 聚合物的合成与表征第107-108页
        4.3.2 载药LPNPs的表征第108-110页
            4.3.2.1 载药LPNPs的粒径和形貌观测第108-109页
            4.3.2.2 载药LPNPs的稳定性第109-110页
        4.3.3 DOX/AGA-SS-LPNPs的还原响应性测定第110-111页
        4.3.4 载药LPNPs的体外释药行为第111-112页
        4.3.5 细胞毒性实验第112-114页
            4.3.5.1 材料的细胞毒性第112-113页
            4.3.5.2 载药LPNPs的细胞毒性第113-114页
        4.3.6 共聚焦显微镜观察细胞对载药LPNPs的摄取第114-115页
        4.3.7 流式细胞仪检测细胞对载药LPNPs的摄取第115-116页
    4.4 结论第116页
    参考文献第116-120页
第五章 两组分还原敏感脂质-聚合物杂化纳米颗粒胞内还原响应性释药以及体内抗肿瘤效果的研究第120-147页
    5.1 引言第120-121页
    5.2 实验部分第121-127页
        5.2.1 实验材料第121页
        5.2.2 聚合物MPEG-S-S-COOH和MPEG-C-C-COOH的合成第121-122页
        5.2.3 聚合物DLPE-S-S-MPEG和DLPE-C-C-MPEG的合成第122页
        5.2.4 产物表征第122-123页
            5.2.4.1 红外光谱(FTIR)表征第122页
            5.2.4.2 核磁共振氢谱(~1H NMR)表征第122-123页
        5.2.5 LPNPs和载药LPNPs的制备第123页
            5.2.5.1 LPNPs的制备第123页
            5.2.5.2 载药LPNPs的制备第123页
        5.2.6 LPNPs和载药LPNPs的表征第123-124页
            5.2.6.1 DLS测定第123-124页
            5.2.6.2 LPNPs的形貌观察第124页
            5.2.6.3 LPNPs的载药量测定第124页
        5.2.7 还原敏感脂质-聚合物杂化纳米颗粒SLPNPs的还原响应性测定第124页
        5.2.8 载药LPNPs对阿霉素的体外还原响应性释放第124-125页
        5.2.9 细胞毒性实验第125页
        5.2.10 CLSM观察细胞对载药LPNPs的摄取第125页
        5.2.11 FCM考察细胞对载药脂质-聚合物杂化纳米颗粒的摄取第125-126页
        5.2.12 CLSM观察两种载药LPNPs进入细胞的途径第126页
        5.2.13 FCM研究内吞抑制剂对两种载药LPNPs进入细胞的影响第126页
        5.2.14 异种HepG2肿瘤模型的构建第126页
        5.2.15 体内抗肿瘤实验第126-127页
        5.2.16 H&E染色和免疫组化第127页
        5.2.17 体内组织分布第127页
    5.3 结果与讨论第127-143页
        5.3.1 聚合物的合成与表征第127-130页
        5.3.2 脂质-聚合物杂化纳米颗粒的制备第130页
        5.3.3 脂质-聚合物杂化纳米颗粒的表征第130-132页
            5.3.3.1 DLS测定杂化纳米颗粒的物理稳定性第130-131页
            5.3.3.2 DLS测定SLPNPs的还原响应性第131-132页
            5.3.3.3 TEM观察第132页
        5.3.4 载药SLPNPs和ILPNPs的体外释药行为第132-133页
        5.3.5 体外细胞毒性实验第133-135页
        5.3.6 载药LPNPs的体外细胞摄取实验第135-137页
            5.3.6.1 共聚焦显微镜观察细胞对载药LPNPs的摄取第135-136页
            5.3.6.2 流式细胞术观察细胞对载药LPNPs的摄取第136-137页
        5.3.7 细胞的内吞抑制第137-139页
        5.3.8 体内肿瘤生长抑制第139-140页
        5.3.9 H&E染色第140-142页
        5.3.10 PCNA和TUNEL检测第142-143页
        5.3.11 体内组织分布第143页
    5.4 结论第143-144页
    参考文献第144-147页
第六章 表面PEG密度对脂质-聚合物杂化纳米颗粒体外细胞摄取和体内抗肿瘤功效的影响第147-163页
    6.1 前言第147-148页
    6.2 实验部分第148-152页
        6.2.1 实验材料和仪器第148-149页
        6.2.2 LPNPs和载药LPNPs的制备第149页
        6.2.3 不同PEG密度的载药LPNPs体外释药行为第149-150页
        6.2.4 外细胞毒性第150页
        6.2.5 CLSM考察细胞对DOX/SLPNPs的摄取第150页
        6.2.6 FCM考察细胞对DOX/SLPNPs的摄取第150页
        6.2.7 异种HepG2肿瘤模型的构建第150-151页
        6.2.8 体内抗肿瘤实验第151页
        6.2.9 H&E染色和免疫组化第151页
        6.2.10 体内组织分布第151-152页
    6.3 结果与讨论第152-163页
        6.3.1 表面具有不同PEG密度的DOX/SLPNPs的表征第152-153页
        6.3.2 载药SLPNPs的体外释药研究第153-154页
        6.3.3 体外细胞毒性实验第154-156页
        6.3.4 CLSM考察细胞对DOX/SLPNPs的摄取第156-157页
        6.3.5 FCM考察细胞对DOX/SLPNPs的摄取第157-158页
        6.3.6 体内抗肿瘤实验第158-160页
        6.3.7 H&E染色第160页
        6.3.8 组织学和免疫组织学分析第160-161页
        6.3.9 体内组织分布第161-163页
    6.4 结论第163页
参考文献第163-166页
附录 作者在攻博士学位期间已发表的论文第166-167页
致谢第167-168页

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