| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACTS | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 一、引言 | 第12-14页 |
| 二、动物模型制作与取材 | 第14-16页 |
| 2.1 动物模型制作 | 第14页 |
| 2.2 标本采集与保存 | 第14-16页 |
| 三、主要实验仪器、试剂 | 第16-24页 |
| 3.1 试剂和耗材 | 第16-17页 |
| 3.2 主要实验仪器 | 第17-20页 |
| 3.3 部分试剂配制 | 第20-24页 |
| 四、实验方法与步骤 | 第24-32页 |
| 4.1 组织采集 | 第24页 |
| 4.2 RNA的提取 | 第24页 |
| 4.3 RNA的纯化 | 第24-25页 |
| 4.4 RNA的反转录 | 第25页 |
| 4.5 半定量PCR | 第25-26页 |
| 4.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第26-27页 |
| 4.7 组织切片 | 第27-28页 |
| 4.8 Masson染色 | 第28-29页 |
| 4.9 检测血清中的胱抑素C | 第29页 |
| 4.10 Western blot检测肾组织LC3及beclin1等蛋白的表达 | 第29-31页 |
| 4.10.1 蛋白质的提取和浓度测量 | 第29页 |
| 4.10.2 SDS‐聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第29-31页 |
| 4.11统计学分析 | 第31-32页 |
| 五、实验结果 | 第32-38页 |
| 5.1 CBS，CSE，3‐MST在各组肾脏中的表达差别 | 第32-33页 |
| 5.2 硫化氢减轻UUO模型肾脏结构损伤 | 第33页 |
| 5.3 硫化氢对UUO模型小鼠肾功能损伤有保护作用 | 第33-34页 |
| 5.4 硫化氢减轻UUO小鼠肾脏纤维化 | 第34-35页 |
| 5.5 UUO模型小鼠肾脏中FN的表达 | 第35页 |
| 5.6 硫化氢促进UUO模型小鼠肾脏自噬水平增高 | 第35-38页 |
| 六、讨论 | 第38-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 综述 | 第50-63页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64-65页 |
