| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 再生的研究 | 第11-15页 |
| 1.1.1 再生生长机制 | 第11-12页 |
| 1.1.2 不同组织再生研究 | 第12-15页 |
| 1.2 鱼鳍再生研究 | 第15-21页 |
| 1.2.1 鱼鳍再生的发现 | 第15-16页 |
| 1.2.2 斑马鱼鱼鳍基本结构 | 第16-17页 |
| 1.2.3 斑马鱼鱼鳍再生过程 | 第17-18页 |
| 1.2.4 尾鳍再生相关信号转导网络组织 | 第18-19页 |
| 1.2.5 基质金属蛋白酶及可能参与鱼鳍再生的其它基因 | 第19-21页 |
| 1.3 血根碱对炎症的抗性以及对再生的促进作用 | 第21-22页 |
| 1.4 鱼鳍再生研究现状及目的和意义 | 第22-25页 |
| 1.4.1 鱼鳍再生研究现状 | 第22-23页 |
| 1.4.2 鱼鳍再生研究的目的和意义 | 第23-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-39页 |
| 2.1 材料 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 克隆载体和宿主菌 | 第25页 |
| 2.1.3 常用仪器和设备 | 第25页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.5 主要溶液配方 | 第26-29页 |
| 2.2 方法 | 第29-39页 |
| 2.2.1 再生鱼鳍RNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.2.2 反转录cDNA | 第30-31页 |
| 2.2.3 制备斑马鱼尾鳍再生石蜡切片 | 第31页 |
| 2.2.4 石蜡切片HE染色 | 第31-32页 |
| 2.2.5 血根碱饲养斑马鱼 | 第32页 |
| 2.2.6 实时荧光定量(Real-time quantitative PCR) | 第32-33页 |
| 2.2.7 原位杂交研究mmp9和mmp13两个基因在尾鳍再生部位的表达 | 第33-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-55页 |
| 3.1 再生尾鳍RNA的提取 | 第39页 |
| 3.2 鱼鳍再生的形态学分析 | 第39-40页 |
| 3.3 mmp9和mmp13基因序列分析 | 第40-43页 |
| 3.3.1 mmp9基因序列分析 | 第40-42页 |
| 3.3.2 mmp13基因序列分析 | 第42-43页 |
| 3.4 基因mmp9和mmp13在鱼鳍再生过程中的表达模式 | 第43-45页 |
| 3.4.1 基因mmp9和mmp13表达水平分析 | 第43页 |
| 3.4.2 原位杂交结果分析 | 第43-45页 |
| 3.5 血根碱溶液最终浓度的确定 | 第45页 |
| 3.6 血根碱溶液处理后再生尾鳍的形态学变化 | 第45-46页 |
| 3.7 血根碱处理对mmp9和mmp13的表达水平的影响 | 第46-47页 |
| 3.8 血根碱处理对鱼鳍再生相关基因表达水平的影响 | 第47-55页 |
| 4 讨论 | 第55-59页 |
| 4.1 斑马鱼尾鳍再生中的基因表达水平分析 | 第55-56页 |
| 4.2 血根碱处理对鱼鳍再生中基因表达的影响 | 第56-58页 |
| 4.3 结论和展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第69-71页 |
