| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-21页 |
| 1.1 桦褐孔菌(Inonotusobliquus) | 第8-11页 |
| 1.1.1 桦褐孔菌(Inonotusobliquus)的分布及形态特征 | 第8页 |
| 1.1.2 桦褐孔菌(Inonotusobliquus)的活性成分 | 第8-9页 |
| 1.1.3 桦褐孔菌的药理活性 | 第9-11页 |
| 1.2 桦褐孔菌醇(inotodiol)的理化性质和提取分离纯化 | 第11-14页 |
| 1.2.1 桦褐孔菌醇(inotodiol)的化学结构 | 第11-12页 |
| 1.2.2 桦褐孔菌醇(inotodiol)药理活性 | 第12页 |
| 1.2.3 桦褐孔菌醇的提取和分离纯化 | 第12-13页 |
| 1.2.3.1 超声波辅助提取 | 第13页 |
| 1.2.3.2 有机溶剂提取法 | 第13页 |
| 1.2.3.3 索式抽提法 | 第13页 |
| 1.2.4 桦褐孔菌醇(inotodiol)的分离纯化 | 第13-14页 |
| 1.2.4.1 硅胶柱层析反复分离法 | 第13-14页 |
| 1.2.4.2 高速逆流色谱分离法 | 第14页 |
| 1.2.4.3 高效液相色谱法 | 第14页 |
| 1.3 制备型HPLC法及其在相关领域的应用 | 第14-19页 |
| 1.3.1 制备型HPLC法 | 第14-16页 |
| 1.3.2 制备型高效液相色谱法的分离成本 | 第16-17页 |
| 1.3.3 制备型高效液相色谱法的线性放大 | 第17页 |
| 1.3.4 制备型HPLC法在生物及医药领域的应用 | 第17-19页 |
| 1.3.4.1 制备型HPLC在分离制备蛋白质和多肽中的应用 | 第17-18页 |
| 1.3.4.2 制备型HPLC在分离制备手性药物中的应用 | 第18-19页 |
| 1.3.4.3 制备型HPLC在分离制备糖及其衍生物中的应用 | 第19页 |
| 1.3.4.4 制备型HPLC在分离制备生物碱中的应用 | 第19页 |
| 1.4 本课题的立题依据及研究的目的与意义 | 第19-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-29页 |
| 2.1 材料、试剂与仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要仪器及材料 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2 桦褐孔菌醇(inotodiol)样品的提取 | 第22-23页 |
| 2.3 .硅胶柱精制条件研究 | 第23-24页 |
| 2.3.1 硅胶柱洗脱条件研究 | 第23-24页 |
| 2.3.2 桦褐孔菌醇的玻璃柱放大的分离纯化 | 第24页 |
| 2.3.3 硅胶柱层析分离纯化桦褐孔菌醇 | 第24页 |
| 2.4 固相萃取小柱(SPE)分离纯化 | 第24-25页 |
| 2.4.1 固相小柱萃取SPE(SolidPhaseExtraction) | 第24-25页 |
| 2.5 桦褐孔菌醇(inotodiol)HPLC条件研究 | 第25-29页 |
| 2.5.1 色谱条件 | 第25页 |
| 2.5.2 流动相研究 | 第25页 |
| 2.5.3 流动相流速的研究 | 第25-26页 |
| 2.5.4 进样体积的选择 | 第26页 |
| 2.5.5 线性放大 | 第26-29页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第29-45页 |
| 3.1 桦褐孔菌醇(inotodiol)的提取 | 第29-31页 |
| 3.1.1 桦褐孔菌醇的粗提取 | 第29-30页 |
| 3.1.2 硅胶柱分离条件的研究 | 第30-31页 |
| 3.2 固相萃取小柱(SPE)分离纯化 | 第31-32页 |
| 3.3 HPLC分离条件优化 | 第32-45页 |
| 3.3.1 流动相条件的研究 | 第32页 |
| 3.3.2 流动相流速的研究 | 第32-34页 |
| 3.3.3 进样量的选择 | 第34-36页 |
| 3.3.4 制备型高效液相色谱的制备 | 第36页 |
| 3.3.5 桦褐孔菌醇的纯品制备 | 第36-38页 |
| 3.3.6 桦褐孔菌醇(inotodiol)的结构鉴定 | 第38-45页 |
| 3.3.6.1 质谱 | 第38-45页 |
| 第四章 总结 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
