| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章 绪论 | 第17-36页 |
| 1.1 时间分辨荧光分析法 | 第17-32页 |
| 1.1.1 荧光及荧光光谱 | 第17-18页 |
| 1.1.2 长寿命荧光材料 | 第18-25页 |
| 1.1.3 时间分辨荧光分析法概述 | 第25页 |
| 1.1.4 时间分辨荧光分析法在生化分析中的应用进展 | 第25-32页 |
| 1.2 环境水体中重金属离子检测方法 | 第32-33页 |
| 1.2.1 重金属离子 | 第32页 |
| 1.2.2 环境水体中重金属离子污染 | 第32-33页 |
| 1.2.3 检测方法 | 第33页 |
| 1.3 生物分子检测方法 | 第33-35页 |
| 1.3.1 生物分子 | 第33页 |
| 1.3.2 检测方法 | 第33-35页 |
| 1.4 本文构想 | 第35-36页 |
| 第2章 基于长寿命荧光量子点和GNPs的环境水样中汞离子含量检测方法 | 第36-50页 |
| 2.1 前言 | 第36-37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-41页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第37页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.3 水溶性量子点的合成 | 第38-39页 |
| 2.2.4 GNPs颗粒的制备 | 第39-40页 |
| 2.2.5 ssDNA修饰的GNPs的制备 | 第40页 |
| 2.2.6 ssDNA修饰的QDs的制备 | 第40页 |
| 2.2.7 Hg~(2+)检测步骤 | 第40-41页 |
| 2.3 实验结果和讨论 | 第41-48页 |
| 2.3.1 实验原理与双探针模型的建立 | 第41-42页 |
| 2.3.2 实验条件优化 | 第42-44页 |
| 2.3.3 Hg~(2+)检测灵敏性分析 | 第44-45页 |
| 2.3.4 Hg~(2+)检测选择性分析 | 第45-46页 |
| 2.3.5 自来水中Hg~(2+)含量检测研究 | 第46-47页 |
| 2.3.6 该检测方法与原子荧光法对环境水样中Hg~(2+)含量检测的对比 | 第47-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 第3章 “Turn-on”时间分辨荧光传感器对环境水样中汞离子的检测 | 第50-60页 |
| 3.1 前言 | 第50-51页 |
| 3.2 实验部分 | 第51-53页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第51页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第51-52页 |
| 3.2.3 水溶性量子点的合成 | 第52页 |
| 3.2.4 GNPs颗粒的制备 | 第52页 |
| 3.2.5 探针1修饰的GNPs的制备 | 第52页 |
| 3.2.6 探针2修饰的QDs的制备 | 第52-53页 |
| 3.2.7 Hg~(2+)检测步骤 | 第53页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第53-59页 |
| 3.3.1 实验基本原理 | 第53-55页 |
| 3.3.2 实验条件优化 | 第55-56页 |
| 3.3.3 Hg~(2+)传感器的灵敏性分析 | 第56-58页 |
| 3.3.4 传感器选择性分析 | 第58页 |
| 3.3.5 环境水样中Hg~(2+)含量检测研究 | 第58-59页 |
| 3.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第4章 基于氧化石墨烯和长寿命发光量子点的环境水样中汞离子含量检测 | 第60-71页 |
| 4.1 前言 | 第60-61页 |
| 4.2 实验部分 | 第61-62页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第61页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第61页 |
| 4.2.3 ssDNA2修饰的QDs的合成 | 第61-62页 |
| 4.2.4 Hg~(2+)检测步骤 | 第62页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第62-70页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第62-64页 |
| 4.3.2 实验条件优化 | 第64-67页 |
| 4.3.3 检测体系灵敏性分析 | 第67-68页 |
| 4.3.4 检测体系选择性分析 | 第68-69页 |
| 4.3.5 实际环境水样中Hg~(2+)含量检测研究 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 第5章 非标记时间分辨荧光分析法检测凝血酶 | 第71-83页 |
| 5.1 前言 | 第71-72页 |
| 5.2 实验部分 | 第72-75页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第72页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第72-73页 |
| 5.2.3 Tb(AcAc)_3phen的合成 | 第73-74页 |
| 5.2.4 凝血酶检测步骤 | 第74-75页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第75-82页 |
| 5.3.1 实验原理 | 第75页 |
| 5.3.2 实验条件优化 | 第75-76页 |
| 5.3.3 铽配合物荧光强度的潜在影响因素研究 | 第76-78页 |
| 5.3.4 GNPs稳定性的潜在影响因素研究 | 第78-79页 |
| 5.3.5 凝血酶检测的灵敏性分析 | 第79-80页 |
| 5.3.6 凝血酶检测的选择性分析 | 第80-81页 |
| 5.3.7 人血清中凝血酶含量检测研究 | 第81-82页 |
| 5.4 本章小结 | 第82-83页 |
| 第6章 基于核酸适配体的三明治杂交分析法检测凝血酶含量 | 第83-93页 |
| 6.1 前言 | 第83页 |
| 6.2 实验部分 | 第83-88页 |
| 6.2.1 实验仪器 | 第83-84页 |
| 6.2.2 实验试剂 | 第84-85页 |
| 6.2.3 玻片的醛基化 | 第85页 |
| 6.2.4 玻片表面修饰aptamer1 | 第85-86页 |
| 6.2.5 铕配合物Eu(TTA)_3(5-NH_2-phen)醛基化 | 第86页 |
| 6.2.6 铕配合物表面修饰aptamer2 | 第86-87页 |
| 6.2.7 凝血酶检测步骤 | 第87-88页 |
| 6.3 实验结果与讨论 | 第88-92页 |
| 6.3.1 aptamer1浓度的影响 | 第88页 |
| 6.3.2 aptamer与凝血酶反应时间的影响 | 第88-89页 |
| 6.3.3 检测方法的灵敏性分析 | 第89-90页 |
| 6.3.4 检测方法的选择性分析 | 第90-91页 |
| 6.3.5 人血清基质中凝血酶含量的检测 | 第91-92页 |
| 6.4 本章小结 | 第92-93页 |
| 第7章 时间分辨荧光生物传感器对腺苷的检测 | 第93-101页 |
| 7.1 前言 | 第93页 |
| 7.2 实验部分 | 第93-95页 |
| 7.2.1 实验仪器 | 第93页 |
| 7.2.2 实验试剂 | 第93-94页 |
| 7.2.3 玻片表面的醛基化 | 第94页 |
| 7.2.4 玻片表面修饰aptamer | 第94页 |
| 7.2.5 铕配合物醛基化 | 第94页 |
| 7.2.6 ssDNA修饰的铕配合物 | 第94页 |
| 7.2.7 腺苷的检测步骤 | 第94-95页 |
| 7.3 实验结果与讨论 | 第95-100页 |
| 7.3.1 实验基本原理 | 第95-96页 |
| 7.3.2 腺苷检测实验条件的优化 | 第96-97页 |
| 7.3.3 检测方法灵敏性分析 | 第97-99页 |
| 7.3.4 检测方法的选择性分析 | 第99-100页 |
| 7.3.5 人血清中腺苷含量的检测研究 | 第100页 |
| 7.4 本章小结 | 第100-101页 |
| 第8章 基于铕配合物的有机溶剂中痕量水的时间分辨荧光传感器 | 第101-112页 |
| 8.1 前言 | 第101-102页 |
| 8.2 实验部分 | 第102-104页 |
| 8.2.1 实验仪器 | 第102页 |
| 8.2.2 实验试剂 | 第102页 |
| 8.2.3 甲基丙稀酰氯的合成 | 第102-103页 |
| 8.2.4 荧光载体的合成 | 第103页 |
| 8.2.5 玻片的硅烷化修饰 | 第103-104页 |
| 8.2.6 光极膜的制备 | 第104页 |
| 8.2.7 时间分辨荧光光谱的测定 | 第104页 |
| 8.3 实验结果与讨论 | 第104-111页 |
| 8.3.1 不同溶剂中光极膜荧光光谱 | 第104-105页 |
| 8.3.2 pH、溶解氧和离子强度对光极膜的影响研究 | 第105-107页 |
| 8.3.3 三种有机溶剂中不同水含量的检测研究 | 第107-108页 |
| 8.3.4 线性分析 | 第108-110页 |
| 8.3.5 反应时间、可逆性和重现性 | 第110页 |
| 8.3.6 传感器的稳定性和光极膜的寿命研究 | 第110-111页 |
| 8.3.7 实际样品中水含量的分析研究 | 第111页 |
| 8.4 本章小结 | 第111-112页 |
| 结论 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-139页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141-142页 |
