| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 对象和方法 | 第15-33页 |
| 1.1 主要材料、试剂与仪器设备 | 第15-17页 |
| 1.2 试剂配制 | 第17-18页 |
| 1.3 实验方法 | 第18-26页 |
| 1.3.1 人外周血单核细胞的分离 | 第18页 |
| 1.3.2 人类CD14+单核细胞的纯化及DC的分化与成熟 | 第18-19页 |
| 1.3.3 白杨素处理时间和浓度确定 | 第19页 |
| 1.3.4 流式细胞技术分析 | 第19-22页 |
| 1.3.5 树突状细胞抗原摄取能力检测 | 第22页 |
| 1.3.6 混合淋巴细胞反应分析 | 第22页 |
| 1.3.7 成熟DC产生的细胞因子能力检测 | 第22-26页 |
| 1.4 实验动物及来源 | 第26页 |
| 1.5 EAE动物模型的制备 | 第26-27页 |
| 1.5.1 原理 | 第26-27页 |
| 1.5.2 抗原佐剂乳化物的制备 | 第27页 |
| 1.6 白杨素对EAE的免疫治疗作用研究 | 第27-32页 |
| 1.6.1 实验分组 | 第27页 |
| 1.6.2 方法和步骤 | 第27-28页 |
| 1.6.3 EAE小鼠模型判定标准 | 第28-29页 |
| 1.6.4 脊髓组织的石蜡切片制备及组化染色 | 第29-30页 |
| 1.6.5 胞内细胞因子染色 | 第30-31页 |
| 1.6.6 脾脏内DC比例的检测 | 第31-32页 |
| 1.7 统计学处理 | 第32-33页 |
| 结果 | 第33-43页 |
| 2.1 白杨素抑制人CD14+细胞向树突状细胞分化 | 第33-34页 |
| 2.2 白杨素抑制iDC内吞功能 | 第34-35页 |
| 2.3 白杨素抑制成熟DC | 第35-37页 |
| 2.4 白杨素抑制成熟DC介导的异体T细胞增殖(DC抗原呈递功能) | 第37页 |
| 2.5 白杨素抑制成熟DC介导的TH1和TH17分化的潜能 | 第37-38页 |
| 2.6 白杨素能显著抑制小鼠EAE的发生发展 | 第38-39页 |
| 2.6.1 白杨素降低EAE的临床评分 | 第38-39页 |
| 2.6.2 白杨素降低EAE临床评分总分和最高分 | 第39页 |
| 2.7 白杨素改善EAE鼠中枢神经系统炎症和脱髓鞘程度 | 第39-40页 |
| 2.8 白杨素减少牌脏中TH1细胞的生成 | 第40-41页 |
| 2.9 白杨素体内抑制EAE脾脏中DC分化和成熟 | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第52-53页 |
| 综述 最新药物单体治疗多发性硬化症的前景 | 第53-62页 |
| 综述参考文献 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
