| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1. 文献综述及本研究的意义 | 第14-26页 |
| 1.1. 普通荞麦的研究概况 | 第14-26页 |
| 1.1.1. 普通荞麦的起源和演化 | 第14-15页 |
| 1.1.2. 普通荞麦的栽培历史和地位 | 第15页 |
| 1.1.3. 普通荞麦的价值和应用 | 第15页 |
| 1.1.4. 普通荞麦的形态特征和生理特性 | 第15-16页 |
| 1.1.5. 普通荞麦的品种资源与遗传育种研究 | 第16-18页 |
| 1.1.5.1. 普通荞麦的品种资源 | 第16-17页 |
| 1.1.5.2. 普通荞麦的遗传育种研究 | 第17-18页 |
| 1.1.6. 普通荞麦的农艺性状研究和群体遗传研究 | 第18-20页 |
| 1.1.6.1. 普通荞麦的农艺性状研究 | 第18-19页 |
| 1.1.6.2. 普通荞麦的群体遗传研究 | 第19-20页 |
| 1.1.6.2.1. 群体模式 | 第19页 |
| 1.1.6.2.2. 重组自交系群体 | 第19-20页 |
| 1.1.7. 普通荞麦分子标记技术和遗传图谱研究概况 | 第20-24页 |
| 1.1.7.1.普通荞麦分子标记技术 | 第20-22页 |
| 1.1.7.1.1. 分子标记技术的概述 | 第20-21页 |
| 1.1.7.1.2. SSR 标记技术的原理 | 第21页 |
| 1.1.7.1.3. SSR 标记技术的优缺点 | 第21页 |
| 1.1.7.1.4. SSR 标记技术的应用 | 第21-22页 |
| 1.1.7.2. 遗传图谱的研究 | 第22-24页 |
| 1.1.7.2.1. 分子遗传图谱构建的理论基础 | 第22-23页 |
| 1.1.7.2.2. 遗传图谱制作的统计学原理 | 第23-24页 |
| 1.1.7.2.3. DNA 标记分离数据的处理分析 | 第24页 |
| 1.1.8. 普通荞麦重要农艺性状的 QTL 定位研究 | 第24-26页 |
| 1.1.8.1. QTL 定位的基本原理 | 第24-25页 |
| 1.1.8.2. QTL 定位的方法 | 第25-26页 |
| 1.2. 本研究的意义 | 第26页 |
| 2. 材料与方法 | 第26-38页 |
| 2.1. 实验材料、仪器和试剂 | 第26-29页 |
| 2.1.1. 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.2. 实验仪器和试剂 | 第27-29页 |
| 2.1.2.1. 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.2.2. 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.2. 实验技术路线图 | 第29页 |
| 2.3. 实验方法 | 第29-37页 |
| 2.3.1. 荞麦种子的萌发与栽培 | 第29页 |
| 2.3.2. 荞麦农艺性状的测定与记录 | 第29-30页 |
| 2.3.3. 荞麦叶片取样 | 第30页 |
| 2.3.4. CTAB 法提取荞麦的基因组 DNA | 第30-31页 |
| 2.3.4.1. 实验试剂和器材 | 第30-31页 |
| 2.3.4.2. 实验步骤 | 第31页 |
| 2.3.5. 基因组 DNA 纯度和浓度的检测 | 第31-32页 |
| 2.3.5.1. 琼脂糖凝胶电泳检测 DNA 纯度 | 第31页 |
| 2.3.5.2. 紫外分光光度计法检测 DNA 浓度 | 第31-32页 |
| 2.3.5.2.1. 实验试剂和设备 | 第31-32页 |
| 2.3.5.2.2. 实验步骤 | 第32页 |
| 2.3.6. PCR 扩增所需的荞麦 DNA 溶液的配制 | 第32页 |
| 2.3.7. 基因组扩增与 SSR 引物设计 | 第32-34页 |
| 2.3.7.1. SSR 引物设计 | 第32-33页 |
| 2.3.7.2. 实验试剂与 PCR 反应体系 | 第33-34页 |
| 2.3.7.3. PCR 反应程序 | 第34页 |
| 2.3.8. 琼脂糖凝胶电泳检测 PCR 产物 | 第34-35页 |
| 2.3.8.1. 实验试剂 | 第34页 |
| 2.3.8.2. 实验步骤 | 第34-35页 |
| 2.3.9. 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 PCR 产物 | 第35-37页 |
| 2.3.9.1. 实验试剂及溶液的配制 | 第35页 |
| 2.3.9.2. 实验步骤 | 第35-37页 |
| 2.3.9.2.1. 凝胶及凝胶板的制备 | 第36页 |
| 2.3.9.2.2. 电泳程序 | 第36页 |
| 2.3.9.2.3. 银染和显影程序 | 第36-37页 |
| 2.4. 数据的统计和分析方法 | 第37-38页 |
| 2.4.1. 荞麦农艺性状的相关分析与通径分析 | 第37页 |
| 2.4.2. PCR产物电泳谱带的统计和bp值计算 | 第37页 |
| 2.4.3. 标记位点的单因素遗传分析 | 第37页 |
| 2.4.4. 标记位点的等位性和独立性遗传分析 | 第37页 |
| 2.4.5. SSR标记遗传图谱的构建 | 第37页 |
| 2.4.6. 农艺性状的QTL定位 | 第37-38页 |
| 3. 结果与分析 | 第38-71页 |
| 3.1. 荞麦农艺性状的分析 | 第38-40页 |
| 3.1.1. 荞麦农艺性状的变异系数分析 | 第38页 |
| 3.1.2. 荞麦农艺性状的简单相关分析 | 第38-39页 |
| 3.1.3. 荞麦农艺性状的偏相关分析 | 第39页 |
| 3.1.4. 荞麦农艺性状对单株产量的多元回归分析 | 第39-40页 |
| 3.1.5. 荞麦产量性状的通径分析 | 第40页 |
| 3.2. Lorena-3×Homo RIL群体的SSR分析 | 第40-49页 |
| 3.2.1. 标记位点的单因素遗传分析 | 第40-44页 |
| 3.2.2. 标记位点的等位性和独立性遗传分析 | 第44-45页 |
| 3.2.3. SSR标记遗传连锁图谱的构建 | 第45-47页 |
| 3.2.4. 农艺性状的QTL定位 | 第47-49页 |
| 3.3. Homo×甜自100 RIL群体的SSR分析 | 第49-57页 |
| 3.3.1. 标记位点的单因素遗传分析 | 第49-53页 |
| 3.3.2. 标记位点的等位性和独立性遗传分析 | 第53页 |
| 3.3.3. SSR标记遗传图谱的构建 | 第53-55页 |
| 3.3.4. 农艺性状的QTL定位 | 第55-57页 |
| 3.4. 分子标记遗传图谱整合和QTL定位标示 | 第57-60页 |
| 3.5. Lorena-3、Homo和甜自100三个亲本的SSR指纹图谱 | 第60-69页 |
| 3.6. 农艺性状QTL位点标记基因分析 | 第69-71页 |
| 4. 讨论 | 第71-80页 |
| 4.1. 普通荞麦数量性状的相关分析和通径分析 | 第71-72页 |
| 4.2. 普通荞麦SSR标记遗传连锁图谱的构建 | 第72-74页 |
| 4.3. 重要农艺性状的QTL定位和功能分析 | 第74-79页 |
| 4.3.1. 农艺性状的QTL定位及连锁分析 | 第74-75页 |
| 4.3.2. 农艺性状QTL定位对应的SSR标记基因功能分析 | 第75-79页 |
| 4.4. 关于F. esculentum var. homotropicum | 第79-80页 |
| 5. 结论 | 第80-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 附表Ⅰ | 第88-95页 |
| 附表 Ⅱ | 第95-98页 |
| 附表 Ⅲ | 第98-106页 |
| 附表 Ⅳ | 第106-114页 |
| 附录图版 Ⅰ | 第114-115页 |
| 附录图版 Ⅱ | 第115-119页 |
| 英文缩略语 | 第119-120页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第120-121页 |
| 项目经费支持 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
