| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-19页 |
| 1.1 花绒寄甲简介 | 第10-11页 |
| 1.1.1 生物学研究 | 第10页 |
| 1.1.2 人工繁育研究 | 第10-11页 |
| 1.1.3 生物防治研究 | 第11页 |
| 1.2 细胞凋亡与 Caspase | 第11-14页 |
| 1.2.1 细胞凋亡 | 第11-12页 |
| 1.2.2 半胱氨酸蛋白酶(caspase) | 第12-14页 |
| 1.3 内参基因的选择 | 第14-16页 |
| 1.3.1 荧光定量 PCR 技术 | 第14-15页 |
| 1.3.2 内参基因在荧光定量 PCR 中的作用 | 第15-16页 |
| 1.4 结语 | 第16-19页 |
| 1.4.1 本研究的目的意义 | 第16-17页 |
| 1.4.2 花绒寄甲 caspase 及其内参基因的研究现状及本研究的目的 | 第17页 |
| 1.4.3 主要研究内容及技术路线 | 第17-19页 |
| 第二章 花绒寄甲 caspase-1 基因的克隆和 caspase 家族分析 | 第19-33页 |
| 2.1 Caspase 家族分析 | 第19-22页 |
| 2.1.1 检索引物 | 第19页 |
| 2.1.2 花绒寄甲 Caspase 基因家族的组成 | 第19-22页 |
| 2.1.3 小结 | 第22页 |
| 2.2 花绒寄甲成虫 caspase-1 基因的克隆 | 第22-33页 |
| 2.2.1 实验材料及仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.3 实验结果 | 第26-32页 |
| 2.2.4 小结 | 第32-33页 |
| 第三章 花绒寄甲内参基因的筛选 | 第33-43页 |
| 3.1 实验材料及仪器 | 第33页 |
| 3.1.1 实验材料及处理 | 第33页 |
| 3.1.2 仪器 | 第33页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 总 RNA 的提取 | 第33页 |
| 3.2.2 第一链 cDNA 的合成 | 第33页 |
| 3.2.3 内参基因的选择和引物设计 | 第33-34页 |
| 3.2.4 引物检测及标准曲线的制作 | 第34-35页 |
| 3.2.5 荧光定量 PCR 检测样品的表达量 | 第35页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-42页 |
| 3.3.1 总 RNA 质量检测 | 第35-36页 |
| 3.3.2 引物扩增效率及特异性 | 第36-37页 |
| 3.3.3 内参基因的表达稳定性分析 | 第37-42页 |
| 3.4 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 花绒寄甲 Caspase-1 基因的表达研究及酶活分析 | 第43-48页 |
| 4.1 花绒寄甲 Caspase-1 基因的表达研究 | 第43-45页 |
| 4.1.1 实验材料及仪器 | 第43页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 4.1.3 实验结果 | 第44-45页 |
| 4.1.4 小结 | 第45页 |
| 4.2 花绒寄甲 Caspase-1 酶活性分析 | 第45-48页 |
| 4.2.1 实验材料及仪器 | 第45页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.2.3 实验结果 | 第46页 |
| 4.2.4 小结 | 第46-48页 |
| 第五章 讨论 | 第48-52页 |
| 5.1 花绒寄甲 Caspase 基因的类型 | 第48页 |
| 5.2 Caspase-1 基因在花绒寄甲生长发育和衰老过程中起重要作用 | 第48-49页 |
| 5.3 Caspase-1 蛋白酶活性变化响应了其基因的表达变化 | 第49页 |
| 5.4 Real-time PCR 的准确分析与合适的内参基因选择有关 | 第49-50页 |
| 5.5 展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
