中文摘要 | 第9-13页 |
英文摘要 | 第13-15页 |
第一部分:右美托咪定体外对人正常肝细胞作用的实验研究 | 第18-35页 |
一、引言 | 第18-20页 |
二、材料和方法 | 第20-25页 |
2.1 材料 | 第20-21页 |
2.1.1 细胞及试剂 | 第20页 |
2.1.2 抗体 | 第20页 |
2.1.3 主要仪器 | 第20-21页 |
2.2 方法 | 第21-25页 |
2.2.1 细胞培养 | 第21-22页 |
2.2.1.1 细胞复苏 | 第21页 |
2.2.1.2 消化及传代 | 第21-22页 |
2.2.1.3 细胞冻存 | 第22页 |
2.2.1.4 细胞收集 | 第22页 |
2.2.2 MTT增殖试验 | 第22-23页 |
2.2.3 免疫印迹分析 | 第23-25页 |
2.2.3.1 细胞蛋白的提取 | 第23页 |
2.2.3.2 灌胶与上样 | 第23-24页 |
2.2.3.3 电泳 | 第24页 |
2.2.3.4 转膜 | 第24页 |
2.2.3.5 免疫反应 | 第24-25页 |
2.2.4 数据分析 | 第25页 |
三、实验结果 | 第25-27页 |
3.1 右美托咪定对体外培养的正常人肝细胞增殖的影响 | 第25-26页 |
3.2 右美托咪定抑制人肝细胞内TLR4/NF-ΚB信号通路活性 | 第26-27页 |
四、讨论 | 第27-29页 |
五、结论 | 第29-30页 |
六、参考文献 | 第30-35页 |
第二部分:右美托咪定促进小鼠肝切除后肝再生的实验研究 | 第35-57页 |
一、前言 | 第35-36页 |
二、材料和方法 | 第36-42页 |
2.1 材料 | 第36-37页 |
2.1.1 动物 | 第36页 |
2.1.2 试剂 | 第36-37页 |
2.1.3 主要仪器 | 第37页 |
2.2 方法 | 第37-42页 |
2.2.1 70%肝部分切除术(PHx) | 第37-38页 |
2.2.2 分组及药物治疗 | 第38页 |
2.2.3 肝重/体重比值 | 第38页 |
2.2.4 检查肝损伤 | 第38-39页 |
2.2.4.1 评估肝实质损害 | 第38页 |
2.2.4.2 肝组织石蜡切片进行苏木精-伊红染色的组织学检 | 第38-39页 |
2.2.5 免疫印迹分析 | 第39-41页 |
2.2.5.1 体内实验组织蛋白提取 | 第39-40页 |
2.2.5.2 灌胶与上样 | 第40页 |
2.2.5.3 电泳 | 第40页 |
2.2.5.4 转膜 | 第40页 |
2.2.5.5 免疫反应 | 第40-41页 |
2.2.6 TLR4和NF-κB检测 | 第41-42页 |
2.2.7 数据分析 | 第42页 |
三、实验结果 | 第42-47页 |
3.1 Dex对肝切除后肝重/体重比值的影响 | 第42-43页 |
3.2 Dex对肝切除后肝损伤程度的影响 | 第43-45页 |
3.3 右美托咪定对肝部分切除术后的炎症反应的影响 | 第45-46页 |
3.4 Dex对TLR4和NF-κB在肝部分切除术后的影响 | 第46-47页 |
四、讨论 | 第47-51页 |
五、结论 | 第51-52页 |
六、参考文献 | 第52-57页 |
第三部分:右美托咪定促进小鼠肝切除后肝再生分子机制的实验研究 | 第57-75页 |
一、前言 | 第57-60页 |
二、材料和方法 | 第60-65页 |
2.1 材料 | 第60-61页 |
2.1.1 动物 | 第60-61页 |
2.1.2 试剂 | 第61页 |
2.1.3 主要仪器 | 第61页 |
2.2 方法 | 第61-65页 |
2.2.1 70%肝部分切除术(PHx) | 第61-62页 |
2.2.2 分组及药物治疗 | 第62页 |
2.2.3 免疫印迹分析 | 第62-64页 |
2.2.3.1 体内实验组织蛋白提取 | 第62-63页 |
2.2.3.2 胶与上样 | 第63页 |
2.2.3.3 电泳 | 第63页 |
2.2.3.4 转膜 | 第63-64页 |
2.2.3.5 免疫反应 | 第64页 |
2.2.4 IL-1β和TNF-αELISA检测 | 第64-65页 |
2.2.5 数据分析 | 第65页 |
三、实验结果 | 第65-67页 |
3.1 右美托咪定对肝部分切除术后的炎症反应的影响 | 第65-67页 |
四、讨论 | 第67-69页 |
五、结论 | 第69-70页 |
六、参考文献 | 第70-75页 |
综述 | 第75-89页 |
参考文献 | 第81-89页 |
附件 在读期间发表论文情况 | 第89-90页 |
致谢 | 第90-91页 |