| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 生物的光合途径 | 第10-12页 |
| 1.1.1 藻类的光合固碳途径 | 第10-11页 |
| 1.1.2 C_3、C_4植物的光合途径 | 第11-12页 |
| 1.2 无机碳转移固定的分子机制及高光效基因工程 | 第12-13页 |
| 1.2.1 无机碳转移分子机制 | 第12页 |
| 1.2.2 高等植物体内的无机碳转运 | 第12-13页 |
| 1.2.3 藻类的无机碳转运 | 第13页 |
| 1.3 无机碳的固定机制及基因工程 | 第13-15页 |
| 1.3.1 核酮糖-1.5-二磷酸羧化酶/加氧酶(Rubisco)基因 | 第14页 |
| 1.3.2 磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC) | 第14-15页 |
| 1.3.3 蓝藻ictB基因及基因工程研究 | 第15页 |
| 1.4 本研究的目的与内容 | 第15-17页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第15-16页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第16-17页 |
| 2. 蓝细菌固碳基因ictB基因在水稻中的遗传与表达 | 第17-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 水稻材料 | 第17页 |
| 2.1.2 菌株、质粒、启动子 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.2.1 ictB基因表达载体构建 | 第18-23页 |
| 2.2.2 根癌农杆菌介导ictB基因转化水稻 | 第23-24页 |
| 2.2.3 转ictB基因植株目的基因的分子检测 | 第24-25页 |
| 2.2.4 ictB基因在水稻叶片内的表达分析 | 第25-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-35页 |
| 2.3.1 表达载体的构建 | 第28-30页 |
| 2.3.2 ictB基因水稻遗传转化 | 第30-31页 |
| 2.3.3 转基因再生植株ictB基因的分子检测 | 第31-35页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第35-37页 |
| 2.4.1 转基因启动子的选择 | 第35页 |
| 2.4.2 转基因水稻的分子检测 | 第35页 |
| 2.4.3 ictB基因在转基因水稻内的表达 | 第35-37页 |
| 3 转ictB基因水稻的光合生理及结实特性分析 | 第37-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 转ictB基因水稻的光合特性分析 | 第37-38页 |
| 3.2.2 转ictB基因水稻光合酶活性测定 | 第38-39页 |
| 3.2.3 转ictB基因水稻的结实特性考察 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-43页 |
| 3.3.1 转ictB基因水稻光合特性分析 | 第39-42页 |
| 3.3.2 转ictB基因水稻CA活性及Rubisco酶羧化活性分析 | 第42-43页 |
| 3.3.3 转ictB基因水稻结实特性分析 | 第43页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第43-45页 |
| 3.4.1 转ictB基因水稻光合特性与酶活特性分析 | 第43-44页 |
| 3.4.2 转ictB基因水稻产量性状的测定 | 第44-45页 |
| 4 全文讨论 | 第45-47页 |
| 4.1 ictB基因应用于水稻光合及产量遗传改良的效果 | 第45页 |
| 4.2 水稻高光效育种的思考 | 第45-46页 |
| 4.3 后续研究设想 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 附录1 序列对比 | 第52-53页 |
| 附录2 目的基因遗传转化培养基 | 第53-55页 |
| 附录3 缩略词 | 第55-56页 |
| 附录4 实验仪器、设备及试剂 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第59页 |
