| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 铜蓝蛋白基因介绍 | 第10-16页 |
| 1.1.1 铜蓝蛋白概况 | 第10页 |
| 1.1.2 铜蓝蛋白的结构 | 第10-11页 |
| 1.1.3 铜蓝蛋白的生物合成 | 第11页 |
| 1.1.4 铜蓝蛋白在生物体中的分布 | 第11-12页 |
| 1.1.5 铜蓝蛋白的性质 | 第12页 |
| 1.1.6 铜蓝蛋白的生理功能 | 第12-13页 |
| 1.1.7 铜蓝蛋白与人类疾病 | 第13-14页 |
| 1.1.8 铜蓝蛋白研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2 五氯酚的危害 | 第16-18页 |
| 1.2.1 五氯酚简介 | 第16页 |
| 1.2.2 环境中的五氯酚来源 | 第16页 |
| 1.2.3 五氯酚污染现状 | 第16-17页 |
| 1.2.4 五氯酚的毒性 | 第17-18页 |
| 1.3 表观遗传学研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 表观遗传学及DNA甲基化 | 第18-19页 |
| 1.3.2 DNA甲基化与人类疾病 | 第19-20页 |
| 1.3.3 环境污染对DNA甲基化的影响 | 第20页 |
| 1.4 稀有鮈鲫研究概况 | 第20-22页 |
| 1.4.1 稀有鮈鲫介绍 | 第20-21页 |
| 1.4.2 稀有鮈鲫在毒理学和环境监测方面的应用 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第22-24页 |
| 第2章 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因的克隆及序列分析 | 第24-54页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料和方法 | 第24-37页 |
| 2.2.1 试验样品 | 第24-25页 |
| 2.2.2 主要试剂和试剂盒 | 第25页 |
| 2.2.3 常用生物信息学网站和分析软件 | 第25页 |
| 2.2.4 稀有鮈鲫总RNA的提取和cDNA的制备 | 第25-28页 |
| 2.2.5 稀有鮈鲫基因组DNA的提取及检测 | 第28-29页 |
| 2.2.6 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因全长cDNA克隆 | 第29-30页 |
| 2.2.7 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因启动子克隆 | 第30-34页 |
| 2.2.8 PCR产物的纯化、亚克隆和测序 | 第34-35页 |
| 2.2.9 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因生物信息学分析 | 第35页 |
| 2.2.10 稀有鮈鲫铜蓝蛋白组织表达分析 | 第35-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-39页 |
| 2.3.1 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因的克隆 | 第37页 |
| 2.3.2 稀有鮈鲫铜蓝蛋白基因生物信息学分析 | 第37-38页 |
| 2.3.3 稀有鮈鲫铜蓝蛋白组织表达分析 | 第38-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-54页 |
| 第3章 五氯酚对稀有鮈鲫铜蓝蛋白DNA甲基化的影响 | 第54-64页 |
| 3.1 引言 | 第54页 |
| 3.2 材料方法 | 第54-58页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第54页 |
| 3.2.2 试验容器 | 第54页 |
| 3.2.3 试验用标准稀释水的配制 | 第54-55页 |
| 3.2.4 五氯酚及储备液的制备 | 第55页 |
| 3.2.5 毒物暴露处理 | 第55页 |
| 3.2.6 取样及DNA的提取 | 第55页 |
| 3.2.7 甲基化差异分析 | 第55-58页 |
| 3.3 结果与分析 | 第58页 |
| 3.3.1 五氯酚处理结果 | 第58页 |
| 3.3.2 肝脏铜蓝蛋白甲基化差异 | 第58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-59页 |
| 3.5 小结 | 第59-64页 |
| 参考文献 | 第64-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 发表论文及参加课题一览表 | 第78页 |