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酿酒酵母复杂分类性状的遗传解析

摘要第6-7页
Abstract第7页
第一章 文献综述第8-22页
    1 什么是复杂性状第8-9页
    2 复杂性状的研究手段第9-11页
    3 QTL作图的原理和方法第11-13页
    4 酿酒酵母——适合数量遗传学基础研究的模式生物第13页
    5 酿酒酵母絮凝性状第13-16页
        5.1 什么是酿酒酵母絮凝性状第13-14页
        5.2 影响絮凝的基因有哪些第14-15页
        5.3 絮凝的遗传学和分子机制第15页
        5.4 影响絮凝的环境因素第15-16页
        5.5 絮凝是适合数量遗传学研究的非连续复杂性状第16页
    6 酵酒酵母侵袭性第16-20页
        6.1 酿酒酵母侵袭性简介第16-17页
        6.2 酿酒酵母侵袭性遗传分子机制研究现状第17-20页
    7 研究目的和意义第20-22页
第二章 酵母分类复杂性状QTL作图第22-41页
    1 试剂和材料第22-24页
        1.1 试剂第22页
        1.2 溶液第22-23页
        1.3 工具软件第23页
        1.4 仪器第23-24页
        1.5 材料第24页
    2 实验方法第24-28页
        2.1 作图群体的构建第24页
        2.2 作图群体表型测定第24-25页
        2.3 微卫星标记的搜索和基因分型第25页
        2.4 SNP标记的搜索和分型第25-26页
        2.5 酵母DNA提取第26-27页
        2.6 DNA片断的回收纯化第27页
        2.7 全基因组的QTL扫描第27-28页
    3 结果和分析第28-38页
        3.1 絮凝性状的QTL作图第28-32页
            3.1.1 群体构建与表型测定第28-29页
            3.1.2 标记搜索及基因分型第29-30页
            3.1.3 QTL作图与精细定位第30-32页
        3.2 酵母侵袭性QTL作图第32-38页
            3.2.1 侵袭性表型测定第32-35页
            3.2.2 基因型测定第35-36页
            3.2.3 QTL作图与精细定位第36-38页
    4. 讨论第38-41页
        4.1 制约QTL定位的重要因素第38-39页
        4.2 分类性状的遗传基础研究第39-41页
第三章 主效基因的定位与克隆第41-76页
    1 试剂和材料第41-46页
        1.1 试剂第41-42页
        1.2 溶液第42-45页
        1.3 工具软件第45页
        1.4 仪器第45-46页
    2 方法第46-60页
        2.1 基因敲除第46-52页
            2.1.1 抗生素基因敲除法引物设计第46-48页
            2.1.2 置换片断PCR扩增第48页
            2.1.3 酵母转化第48-49页
            2.1.4 转化子验证第49-51页
            2.1.5 5-FOA基因敲除法第51-52页
        2.2 候选基因的序列分析第52-53页
        2.3 等位基因置换第53-60页
            2.3.1 Zeocin抗性筛选法第53-59页
                2.3.1.1 长片断PCR扩增第53-55页
                2.3.1.2 T载体克隆第55-56页
                2.3.1.3 细菌转化第56-57页
                2.3.1.4 连接反应第57页
                2.3.1.5 基因置换质粒的构建第57页
                2.3.1.6 酵母转化第57-59页
            2.3.2 5-FOA置换法第59-60页
    3 结果与分析第60-74页
        3.1 酵母絮凝主效基因的定位与克隆第60-69页
            3.1.1 基因敲除FPQ2、FLO1、FLO8、FPQ15第60-62页
            3.1.2 FPQ2、FL08与FPQ15的等位基因置换第62-63页
            3.1.3 序列分析第63-64页
            3.1.4 序列比FPQ2与FPQ15的错义突变第64-67页
            3.1.5 4个QTG的遗传互作第67-69页
        3.2 酵母侵袭性主效QTL的定位与基因克隆第69-74页
            3.2.1 候选基因的敲除第69-70页
            3.2.2 候选基因序列分析第70-71页
            3.2.3 等位基因置换第71-74页
    4 讨论与结论第74-76页
        4.1 QTG的鉴定——迈出解析复杂性状的关键一步第74页
        4.2 FLO1基因的测序——特异性的保证第74-75页
        4.3 置换失败的原因第75-76页
第四章 基因功能和遗传互作第76-108页
    1 试剂和材料第76-80页
        1.1 试剂第76-77页
        1.2 溶液第77-79页
        1.3 工具软件第79页
        1.4 仪器第79-80页
    2 方法第80-88页
        2.1 双缺失和多缺失株的构建第80-81页
            2.1.1 双缺失株的构建第80页
            2.1.2 YL1Cfpq2△的相反结合型菌株的构建第80页
            2.1.3 基因缺失组合菌株的构建第80-81页
        2.2 基因表达量的检测方法第81-82页
            2.2.1 酵母RNA提取第81页
            2.2.2 逆转录第81页
            2.2.3 定量PCR第81-82页
        2.3 蛋白水平检测第82-83页
            2.3.1 酵母蛋白质抽提第82页
            2.3.2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第82页
            2.3.3 转膜第82-83页
            2.3.4 检测第83页
        2.4 钙离子阻断极端絮凝第83-84页
        2.5 S2与S5 FLO1敲除第84页
        2.6 定点突变和QTN鉴定第84-85页
            2.6.1 定点突变引物设计第84-85页
            2.6.2 基因拼接第85页
        2.7 酵母双杂—营养缺陷型法、β-半乳糖苷酶显色法第85-87页
            2.7.1 所用到的报告菌株第85-86页
            2.7.2 质粒第86页
            2.7.3 将以上按如下组合质粒转入两报告菌株Y187,AH109第86页
            2.7.4 β-半乳糖苷酶活力测定第86-87页
            2.7.5 His报告基因的验证第87页
        2.8 FPQ2缺失后乙醇耐性的检测第87-88页
    3 结果与分析第88-108页
        3.1 酵母絮凝性状的遗传分子机理第88-101页
            3.1.1 双缺失与多缺失株的表型测定第88页
            3.1.2 QTN的鉴定第88-90页
            3.1.3 Fpq2与Tem1酵母双杂实验(补充数据)第90-92页
            3.1.4 QTG表达量与蛋白水平的检测第92-97页
                3.1.4.1 检测FPQ2、FLO1、FLO8、FPQ15四个QTG在两亲本中的表达水平第92-93页
                3.1.4.2 子代不同表型个体中FLO基因家族表达量比较第93-94页
                3.1.4.3 FL01定量PCR的特异性第94-97页
            3.1.5 FLO8、FPQ15对FPQ2基因的互作第97-98页
            3.1.6 Ca~(2+)对极端絮凝表型的阻断第98-99页
            3.1.7 F_2子代超亲分离个体的FLO1基因敲除第99-100页
            3.1.8 细胞絮凝对酵母乙醇耐受性的影响第100-101页
        3.2 酿酒酵母侵袭性多基因网络的初步分析第101-108页
            3.2.1 FPQ15与FLO11基因的表达量分析第101-102页
            3.2.2 FLO11启动子测序第102-104页
            3.2.3 通过构建双缺失株探索QTL基因之间的互作与联系第104-107页
            3.2.4 FPQ15点突变鉴定第107-108页
4 结论第108-113页
    4.1 絮凝性状的三个不同调控途径第108-112页
        4.1.1 超亲分离的产FLO基因家族的基因型组合第108-109页
        4.1.2 FPQ2——一种全新的絮凝机制第109-110页
        4.1.3 FPQ15——出芽方式的改变引起细胞絮凝第110-112页
    4.2 初步构建侵袭性多基因网络第112-113页
5 讨论第113-115页
    5.1 复杂性状往往是包含多个性状的复合体第113页
    5.2 FPQ2——更重要的絮凝控制基因第113-114页
    5.3 研究展望第114-115页
参考文献第115-123页
致谢第123-124页

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