| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-15页 |
| 2 小鼠骨髓间充质干细胞的复苏、传代 | 第15-22页 |
| 2.1 引言 | 第15页 |
| 2.2 主要试剂与设备 | 第15-16页 |
| 2.2.1 主要实验试剂 | 第15页 |
| 2.2.2 材料和仪器 | 第15-16页 |
| 2.2.3 相关实验试剂配置 | 第16页 |
| 2.3 实验方法 | 第16-18页 |
| 2.3.1 BALB/C小鼠BMSCS的复苏 | 第16-17页 |
| 2.3.2 BALB/C小鼠BMSCS的传代 | 第17-18页 |
| 2.3.3 生物发光成像 | 第18页 |
| 2.4 结果 | 第18-20页 |
| 2.5 讨论 | 第20-21页 |
| 2.6 结论 | 第21-22页 |
| 3 小鼠单侧输尿管损伤模型制备及经肾动脉移植BMSCS方法的建立 | 第22-37页 |
| 3.1 引言 | 第22页 |
| 3.2 实验材料 | 第22-23页 |
| 3.2.1 实验动物及饲养 | 第22页 |
| 3.2.2 主要实验药品与试剂 | 第22-23页 |
| 3.2.3 液体配置 | 第23页 |
| 3.3 实验流程及分组 | 第23-25页 |
| 3.3.1 实验流程 | 第23-24页 |
| 3.3.2 实验分组 | 第24-25页 |
| 3.4 实验方法 | 第25-29页 |
| 3.4.1 显微血管夹法建立小鼠单侧输尿管梗阻的动物模型 | 第25-26页 |
| 3.4.2 取出显微血管夹解除小鼠左侧输尿管梗阻 | 第26-27页 |
| 3.4.3 经小鼠肾动脉移植BMSCS | 第27-28页 |
| 3.4.4 活体成像评估及示踪经肾动脉移植的BMSCS | 第28-29页 |
| 3.5 结果 | 第29-32页 |
| 3.5.1 手术步骤标准化 | 第29页 |
| 3.5.2 梗阻模型评估 | 第29-30页 |
| 3.5.3 动脉移植模型评估 | 第30-31页 |
| 3.5.4 单侧输尿管梗阻后解除的模型评估 | 第31-32页 |
| 3.6 讨论 | 第32-35页 |
| 3.6.1 小鼠单侧输尿管梗阻后解除的模型建立 | 第32-33页 |
| 3.6.2 经小鼠肾动脉移植BMSCS的模型建立 | 第33-35页 |
| 3.7 结论 | 第35-37页 |
| 4 MRI评估小鼠单侧输尿管梗阻解除后输尿管的复通率 | 第37-50页 |
| 4.1 引言 | 第37页 |
| 4.2 实验材料 | 第37页 |
| 4.2.1 实验动物及饲养 | 第37页 |
| 4.2.2 主要实验药品与试剂 | 第37页 |
| 4.3 实验方法 | 第37-38页 |
| 4.4 统计学分析 | 第38-39页 |
| 4.5 结果 | 第39-45页 |
| 4.5.1 MRI T2FSE序列上的图像观察及比较 | 第39-41页 |
| 4.5.2 小鼠输尿管梗阻模型制备评估 | 第41-43页 |
| 4.5.3 实验组与对照组小鼠输尿管梗阻解除后输尿管复通的比较 | 第43-45页 |
| 4.6 讨论 | 第45-49页 |
| 4.7 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 综述 | 第57-67页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
