摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第1章 绪论 | 第15-19页 |
1.1 引言 | 第15-17页 |
1.2 技术路线 | 第17-19页 |
1.2.1 HUVECs形态观察 | 第17页 |
1.2.2 构建HUVECs的氧化损伤模型 | 第17页 |
1.2.3 CYGB对oxLDL处理的HUVECs的保护作用 | 第17-18页 |
1.2.4 CYGB对oxLDL处理的HUVECs保护作用的初步机制 | 第18-19页 |
第2章 实验材料 | 第19-21页 |
2.1 细胞株 | 第19页 |
2.2 主要试剂 | 第19-20页 |
2.3 主要仪器 | 第20页 |
2.4 数据分析 | 第20-21页 |
第3章 实验方法 | 第21-31页 |
3.1 细胞培养 | 第21-22页 |
3.1.1 细胞复苏 | 第21页 |
3.1.2 细胞传代 | 第21页 |
3.1.3 细胞冻存 | 第21-22页 |
3.2 实验分组 | 第22-23页 |
3.3 oxLDL处理HUVECs对CYGB表达的影响 | 第23-26页 |
3.3.1 不同浓度的oxLDL处理HUVECs对CYGB表达的影响 | 第23-25页 |
3.3.1.1 试剂配制 | 第23-24页 |
3.3.1.2 蛋白提取 | 第24页 |
3.3.1.3 蛋白定量 | 第24页 |
3.3.1.4 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第24-25页 |
3.3.2 oxLDL处理HUVECs不同时间对CYGB表达的影响 | 第25-26页 |
3.4 CYGB表达/干扰HUVECs模型的构建和鉴定 | 第26页 |
3.5 GSH-PX活性测定 | 第26-28页 |
3.5.1 试剂组成及配制 | 第26-27页 |
3.5.2 样本处理 | 第27页 |
3.5.3 GSH-PX活性测定操作步骤 | 第27-28页 |
3.6 SOD活性检测 | 第28-29页 |
3.6.1 试剂组成及配制 | 第28页 |
3.6.2 样本处理 | 第28页 |
3.6.3 SOD活性检测步骤 | 第28-29页 |
3.7 LDH活性检测 | 第29-30页 |
3.7.1 试剂组成及配制 | 第29页 |
3.7.2 样本处理 | 第29页 |
3.7.3 LDH活性检测步骤 | 第29-30页 |
3.8 MDA含量检测 | 第30-31页 |
3.8.1 试剂组成及配制 | 第30页 |
3.8.2 样品处理 | 第30页 |
3.8.3 MDA含量检测步骤 | 第30-31页 |
第4章 实验结果 | 第31-47页 |
4.1 细胞形态学观察结果 | 第31页 |
4.2 oxLDL处理HUVECs对CYGB表达的影响 | 第31-33页 |
4.2.1 不同浓度oxLDL处理HUVECs对CYGB表达的影响 | 第31-32页 |
4.2.2 oxLDL处理HUVECs不同时间对CYGB表达的影响 | 第32-33页 |
4.3 CYGB对oxLDL处理的HUVECs的拮抗作用 | 第33-40页 |
4.3.1 CYGB表达/干扰HUVECs的构建和鉴定 | 第33-34页 |
4.3.2 oxLDL处理HUVECs对CYGB蛋白表达的影响 | 第34-35页 |
4.3.3 CYGB对oxLDL处理HUVECs时GSH-PX、SOD、LDH活性及MDA含量的影响 | 第35-38页 |
4.3.4 CYGB对oxLDL处理HUVECs时Bcl2、Bax蛋白表达的影响 | 第38-40页 |
4.4 PKC抑制剂对HUVECs CYGB蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
4.4.1 PKC抑制剂的抑制效果 | 第40页 |
4.4.2 PKC抑制剂对oxLDL处理的HUVECs中CYGB蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
4.5 CYGB对oxLDL处理的HUVECs的拮抗作用的初步机制 | 第41-47页 |
4.5.1 PKC抑制剂对oxLDL处理的HUVECs中SOD、GSH-PX、LDH活性及MDA含量的影响 | 第41-44页 |
4.5.2 PKC抑制剂对oxLDL处理的HUVECs中Bcl2、Bax蛋白表达的影响 | 第44-47页 |
第5章 讨论 | 第47-51页 |
第6章 结论 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-57页 |
综述 新型缺氧保护因子胞红蛋白的研究进展 | 第57-69页 |
参考文献 | 第64-69页 |
攻读学位期间的科研成果 | 第69-70页 |
课题资助情况 | 第70-71页 |
致谢 | 第71-72页 |