| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7页 |
| 主要符号表 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-13页 |
| 材料与方法 | 第13-23页 |
| 1.实验材料 | 第13-17页 |
| 1.1 细胞系 | 第13页 |
| 1.2 主要试剂和药品 | 第13-14页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第14-15页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第15-17页 |
| 2.研究方法 | 第17-23页 |
| 2.1 细胞培养 | 第17-18页 |
| 2.2 MTT法细胞增殖检测 | 第18-19页 |
| 2.3 L-乳酸试剂盒检测乳酸生成量 | 第19页 |
| 2.4 葡萄糖吸收量测定 | 第19页 |
| 2.5 ATP试剂盒检测ATP生成量 | 第19-20页 |
| 2.6 细胞周期分析 | 第20页 |
| 2.7 膜联蛋白Ⅴ测定 | 第20页 |
| 2.8 Caspase-3 测定 | 第20-21页 |
| 2.9 蛋白质印迹分析 | 第21-22页 |
| 2.10 统计分析 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-33页 |
| 3.1 卵巢癌细胞依赖于葡萄糖存活 | 第23-24页 |
| 3.2 低糖与无糖条件诱导卵巢癌细胞凋亡 | 第24-25页 |
| 3.3 低糖与无糖条件诱导卵巢癌细胞周期G1期阻滞 | 第25页 |
| 3.4 抑制糖酵解或谷氨酰胺分解降低卵巢癌细胞增殖 | 第25-26页 |
| 3.5 AOA联合 2-DG协同抑制卵巢癌细胞增殖 | 第26-27页 |
| 3.6 结果附图 | 第27-33页 |
| 讨论 | 第33-39页 |
| 结论 | 第39-41页 |
| 创新与不足 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 攻读学位期间取得的成果 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
