| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 中英文对照缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-19页 |
| 1.1 基于纳米载药系统的靶向治疗 | 第16页 |
| 1.2 纳米载药系统在卵巢癌中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3 IGF信号轴在卵巢癌复发中的作用 | 第17页 |
| 1.4 介孔二氧化硅作为载药系统的应用 | 第17-18页 |
| 1.5 研究目的及预期结果 | 第18-19页 |
| 第二章 胰岛素样生长因子受体通路对卵巢癌干细胞样细胞增殖抗凋亡的作用 | 第19-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验器材 | 第19页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要试剂配置 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 细胞培养方法 | 第21页 |
| 2.2.2 免疫细胞化学法检测CD117~+CD44~+A2780细胞中IGF-1,IGF-2和IGF-1R蛋白的表达 | 第21-22页 |
| 2.2.3 流式细胞术检测CD117~+CD44~+A2780细胞株中IGF-1R蛋白的表达 | 第22页 |
| 2.2.4 细胞计数筛选适宜的IGF-1浓度 | 第22-23页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测IGF-1刺激组,NVP抑制组和空白对照组的细胞周期和细胞凋亡率 | 第23页 |
| 2.2.6 Western Blotting检测三组周期蛋白B1的表达 | 第23-26页 |
| 2.2.7 统计分析 | 第26页 |
| 2.3 实验结果 | 第26-30页 |
| 2.3.1 CD117~+CD44~+A2780细胞中IGF-1,IGF-2和IGF-1R的表达 | 第26页 |
| 2.3.2 CD117~+CD44~+A2780细胞株中的IGF-1R的表达 | 第26-27页 |
| 2.3.3 适宜的IGF-1浓度 | 第27页 |
| 2.3.4 IGF-1刺激组,NVP抑制组和空白对照组中CD117~+CD44~+A2780的细胞周期分布和细胞凋亡率 | 第27-29页 |
| 2.3.5 Western Blotting检测IGF-1刺激组,NVP抑制组和空白对照组中细胞周期蛋白B1的表达 | 第29-30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-31页 |
| 第三章 HMSN-COOH@DOX FLUORESCENCE NVP复合载药系统的合成 | 第31-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第31页 |
| 3.1.2 主要实验器材 | 第31-32页 |
| 3.1.3 主要实验试剂 | 第32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-35页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第32页 |
| 3.2.2 HMSN表面修饰羧酸 | 第32页 |
| 3.2.3 构建HMSN-COOH@DOX fluorescence NVP复合载药系统 | 第32-33页 |
| 3.2.4 阿霉素包封率和载药量的测定 | 第33页 |
| 3.2.5 荧光NVP包封率和载药量的测定 | 第33页 |
| 3.2.6 不同PH值PBS溶液中HMSN复合载药系统DOX和荧光NVP的释放率 | 第33-34页 |
| 3.2.7 HMSN复合载药系统的物理表征 | 第34页 |
| 3.2.8 HMSN复合载药系统在CD117~+CD44~+A2780细胞中的聚集 | 第34-35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-39页 |
| 3.3.1 HMSN复合载药系统的物理表征 | 第35-36页 |
| 3.3.2 HMSN复合载药系统中DOX的包封率,载药量和释放率 | 第36-37页 |
| 3.3.3 HMSN复合载药系统中荧光NVP的包封率,载药量和释放率 | 第37页 |
| 3.3.4 共聚焦观察HMSN复合载药系统在胞内的聚集情况 | 第37-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-40页 |
| 第四章 HMSN复合载药系统对CD117~+CD44~+A2780卵巢癌干细胞样细胞增殖和凋亡的影响 | 第40-48页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第40页 |
| 4.1.2 主要实验器材 | 第40页 |
| 4.1.3 主要实验试剂 | 第40-41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-45页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 4.2.2 流式细胞分析术检测复合载药系统对CD117~+CD44~+A2780细胞凋亡率的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.3 MTT法检测三组细胞的抑制率 | 第42页 |
| 4.2.4 Western Blotting检测三组细胞中Bax,Bcl-xl,P-akt的表达 | 第42-45页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第45页 |
| 4.3 实验结果 | 第45-46页 |
| 4.3.1 HMSN-COOH@DOX fluorescence NVP,HMSN-COOH@DOX和游离DOX荧光NVP三组细胞的凋亡率 | 第45页 |
| 4.3.2 HMSN-COOH@DOX fluorescence NVP,HMSN-COOH@DOX和游离DOX荧光NVP三组的MTT抑制率 | 第45-46页 |
| 4.3.3 HMSN-COOH@DOX fluorescence NVP,HMSN-COOH@DOX和游离DOX荧光NVP三组细胞中蛋白Bax,Bcl-xl,P-akt的表达 | 第46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-48页 |
| 第五章 介孔二氧化硅在疾病诊断和治疗中作用的研究进展 | 第48-55页 |
| 5.1 生物医学相关的纳米技术 | 第48-49页 |
| 5.1.1 有机纳米材料 | 第48-49页 |
| 5.1.2 无机纳米材料 | 第49页 |
| 5.2. 纳米粒子在疾病诊断和治疗中的作用 | 第49-50页 |
| 5.3 介孔二氧化硅作为抗肿瘤药物运载体的简要发展过程 | 第50-51页 |
| 5.4 介孔二氧化硅作为抗肿瘤药物载体的主要优势因素 | 第51页 |
| 5.5 介孔二氧化硅的被动靶向 | 第51-52页 |
| 5.6 介孔二氧化硅的主动靶向 | 第52-53页 |
| 5.7 小结和展望 | 第53-55页 |
| 总结与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
