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PLGA缓释微球制备条件对蛋白药物活性及免疫原性的影响

摘要第5-8页
ABSTRACT第8-9页
第一章 前言第14-22页
    1.1 EPO 缓释剂型的研究意义第14-15页
    1.2 EPO 缓释微球的研究进展第15-16页
        1.2.1 担载EPO 的PLGA 微球的研究第15页
        1.2.2 担载EPO 的其它载体微球的研究第15-16页
    1.3 EPO 的免疫原性第16-17页
    1.4 检测EPO 抗体的方法第17-20页
    1.5 研究思路与实验方案第20-22页
第二章 EPO 微球的制备第22-31页
    2.1 仪器与试剂第22-24页
        2.1.1 主要仪器设备第22-23页
        2.1.2 主要试剂第23-24页
    2.2 实验方法第24-26页
        2.2.1 EPO-葡聚糖玻璃体颗粒制备第24-25页
        2.2.2 EPO 缓释微球的制备第25-26页
        2.2.3 EPO-葡聚糖玻璃体颗粒和 EPO 微球表面形态表征第26页
        2.2.4 EPO-葡聚糖玻璃体颗粒的密度考察第26页
    2.3 结果与讨论第26-30页
        2.3.1 EPO-葡聚糖玻璃体颗粒第27-28页
        2.3.2 EPO 微球第28-30页
    2.4 小结第30-31页
第三章 微球制备过程中 EPO 聚集体的研究第31-40页
    3.1 仪器与试剂第31-32页
        3.1.1 主要仪器设备第31页
        3.1.2 主要试剂第31-32页
    3.2 实验方法第32-33页
        3.2.1 EPO 聚集体检测法-SEC-HPLC 的建立第32-33页
    3.3 结果与讨论第33-39页
        3.3.1 EPO 标准曲线的建立第33-34页
        3.3.2 微球制备过程中EPO 的包封率第34-35页
        3.3.3 微球制备过程中EPO 的聚集体第35-39页
    3.4 小结第39-40页
第四章 微球制备过程中 EPO 活性的研究第40-48页
    4.1 仪器与试剂第40-41页
        4.1.1 主要仪器设备第40页
        4.1.2 主要试剂第40-41页
    4.2 实验方法第41-44页
        4.2.1 EPO 包封率的测定-ELISA第41-42页
        4.2.2 EPO 生物活性的测定-UT-7 细胞实验第42-44页
    4.3 结果与讨论第44-47页
        4.3.1 EPO 包封率的测定第44-45页
        4.3.2 EPO 生物活性的测定第45-47页
    4.4 小结第47-48页
第五章 EPO 微球体内免疫原性的研究第48-65页
    5.1 仪器与试剂第48-50页
        5.1.1 主要仪器设备第48-49页
        5.1.2 主要试剂第49-50页
    5.2 实验方法第50-55页
        5.2.1 BALB/C 小鼠体内实验第50-51页
        5.2.2 小鼠体内抗体的检测-ELISA第51-53页
        5.2.3 小鼠体内抗体的检测-细胞生长抑制实验第53-55页
    5.3 结果与讨论第55-64页
        5.3.1 ELISA 抗体检测结果第55-59页
        5.3.2 细胞生长抑制实验抗体检测结果第59-64页
    5.4 小结第64-65页
全文总结第65-66页
参考文献第66-71页
致谢第71-72页
攻读学位期间发表的学术论文第72页

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