摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
第1章 绪论 | 第9-18页 |
1.1 烟草霉变的主要因素 | 第9-11页 |
1.1.1 寄主 | 第9-10页 |
1.1.2 病原 | 第10页 |
1.1.3 环境因素 | 第10-11页 |
1.2 储烟防霉技术 | 第11-14页 |
1.2.1 物理防霉法 | 第11页 |
1.2.2 生物防霉法 | 第11-12页 |
1.2.3 传统化学防霉法 | 第12-13页 |
1.2.4 植物源防腐剂 | 第13-14页 |
1.3 微生物预测模型的研究现状 | 第14-15页 |
1.3.1 初级模型 | 第14页 |
1.3.2 二级模型 | 第14页 |
1.3.3 三级模型 | 第14-15页 |
1.4 本课题研究意义 | 第15页 |
1.5 本课题研究的主要内容 | 第15-16页 |
参考文献 | 第16-18页 |
第2章 卷烟中腐败菌的分离鉴定 | 第18-31页 |
2.1 材料与方法 | 第18-19页 |
2.1.1 实验材料 | 第18-19页 |
2.1.2 主要设备 | 第19页 |
2.2 实验方法 | 第19-22页 |
2.2.1 腐败菌的分离、纯化 | 第19页 |
2.2.2 霉菌的鉴定 | 第19-20页 |
2.2.3 生理生化特征 | 第20页 |
2.2.4 18SrDNA目标片断的PCR扩增 | 第20-21页 |
2.2.5 18SrDNA序列的比对 | 第21-22页 |
2.3 结果与分析 | 第22-29页 |
2.3.1 卷烟中分离出的优势菌种 | 第22-23页 |
2.3.2 显微镜观察 | 第23页 |
2.3.3 生理生化分析 | 第23-24页 |
2.3.4 菌种18SrDNA的PCR扩增 | 第24-25页 |
2.3.5 菌种A18SrDNA序列的测定 | 第25-26页 |
2.3.6 菌种M18SrDNA序列的测定 | 第26-27页 |
2.3.7 菌种P18SrDNA序列的测定 | 第27页 |
2.3.8 菌种S18SrDNA序列的测定 | 第27-29页 |
2.4 讨论 | 第29页 |
2.5 总结 | 第29-30页 |
参考文献 | 第30-31页 |
第3章 香辛料复配提取物对卷烟中腐败菌抑菌作用的研究 | 第31-42页 |
3.1 材料与方法 | 第32页 |
3.1.1 实验材料 | 第32页 |
3.1.2 主要设备 | 第32页 |
3.2 实验方法 | 第32-34页 |
3.2.1 抑菌物质的提取 | 第32页 |
3.2.2 菌悬液的制备 | 第32-33页 |
3.2.3 抑菌性实验方法 | 第33页 |
3.2.4 提取液的复配 | 第33-34页 |
3.2.5 最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第34页 |
3.2.6 复配提取液对混合菌种的抑制作用 | 第34页 |
3.3 结果与分析 | 第34-38页 |
3.3.1 不同提取液的抑菌作用 | 第34-36页 |
3.3.2 筛选提取液对卷烟中优势菌种的作用 | 第36页 |
3.3.3 提取液复配比的确定 | 第36-38页 |
3.3.4 最小抑菌浓度(MIC) | 第38页 |
3.3.5 复配提取液对混合菌种的最小抑菌浓度(MIC) | 第38页 |
3.4 讨论 | 第38-39页 |
3.5 结论 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-42页 |
第4章 杂色曲霉生长及复配提取液对其影响的生长模型的建立 | 第42-54页 |
4.1 材料与方法 | 第42-43页 |
4.1.1 实验材料 | 第42页 |
4.1.2 主要设备 | 第42-43页 |
4.2 实验方法 | 第43-44页 |
4.2.1 温度、水分活度对杂色曲霉生长的影响 | 第43页 |
4.2.2 复配提取液对杂色曲霉生长的影响 | 第43页 |
4.2.3 生长模型的拟合 | 第43-44页 |
4.2.4 模型的验证与可靠性评价 | 第44页 |
4.3 结果与分析 | 第44-50页 |
4.3.1 不同温度下杂色曲霉菌落直径的变化 | 第44-47页 |
4.3.2 不同复配液浓度作用下的菌落生长 | 第47-48页 |
4.3.3 不同初级模型的建立与比较 | 第48-50页 |
4.4 讨论 | 第50-51页 |
4.5 结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-54页 |
全文结论 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |