| 中文摘要 | 第9-18页 |
| ABSTRACT | 第18-28页 |
| 符号说明 | 第29-31页 |
| 第一部分 AF1q的转录调控 | 第31-76页 |
| 第一章 前言 | 第31-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-61页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第34-39页 |
| 2.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 2.3 质粒的构建 | 第40-48页 |
| 2.4 细胞培养 | 第48-50页 |
| 2.5 细胞转染 | 第50页 |
| 2.6 双荧光素酶报告基因分析 | 第50-51页 |
| 2.7 RNA提取及RT-PCR | 第51-53页 |
| 2.8 Western Bloting蛋白分析 | 第53-56页 |
| 2.9 凝胶迁移率实验(Electrophoretic Mobility Shift Assay,EMSA) | 第56-58页 |
| 2.10 染色质免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation,ChIP) | 第58-60页 |
| 2.11 实验动物 | 第60页 |
| 2.12 核苷酸序列编号 | 第60页 |
| 2.13 数据分析 | 第60-61页 |
| 第三章 实验结果 | 第61-71页 |
| 3.1 Af1q在阿尔茨海默病鼠模型中表达相对较低 | 第61-62页 |
| 3.2 REST能够抑制人类AF1q基因的表达 | 第62-64页 |
| 3.3 确定AF1q基因启动子上功能性NRSE结合位点 | 第64-69页 |
| 3.4 AF1q与Rest在小鼠脑内表达呈负相关 | 第69-71页 |
| 第四章 讨论与总结 | 第71-74页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 第二部分 AFlq通过TCF7激活Wnt信号通路参与神经发育过程的研究 | 第76-120页 |
| 第一章 前言 | 第76-78页 |
| 第二章 材料与方法 | 第78-92页 |
| 2.1 实验材料和试剂 | 第78页 |
| 2.2 主要实验仪器 | 第78-79页 |
| 2.3 Western blot胶的配制 | 第79-80页 |
| 2.4 慢病毒的包装、浓缩和感染 | 第80-81页 |
| 2.5 表达载体的构建 | 第81-85页 |
| 2.6 流式细胞术检测细胞周期 | 第85-86页 |
| 2.7 细胞培养及传代 | 第86页 |
| 2.8 神经干细胞的培养 | 第86-87页 |
| 2.9 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,Co-IP) | 第87-88页 |
| 2.10 核蛋白的提取 | 第88-89页 |
| 2.11 神经球Nestin免疫荧光染色 | 第89页 |
| 2.12 MTT检测细胞增殖 | 第89-90页 |
| 2.13 EdU检测细胞增殖 | 第90-91页 |
| 2.14 数据分析 | 第91-92页 |
| 第三章 实验结果 | 第92-110页 |
| 3.1 AF1q促进SH-SY5Y细胞以及神经干细胞的增殖抑制向神经元方向分化 | 第92-98页 |
| 3.2 AF1q通过TCF7激活Wnt信号通路 | 第98-104页 |
| 3.3 TCF7与AF1q结合位点的确定 | 第104-105页 |
| 3.4 磷酸化的AF1q起重要作用 | 第105-110页 |
| 第四章 讨论与总结 | 第110-117页 |
| 参考文献 | 第117-120页 |
| 第三部分 文献综述 AF1q在相关疾病中的作用及其机制研究进展 | 第120-131页 |
| 参考文献 | 第128-131页 |
| 总结 | 第131-132页 |
| 文章创新点及意义 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133-135页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第135-136页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第136-137页 |
| English anicles Ⅰ | 第137-150页 |
| English anicles Ⅱ | 第150-169页 |
