| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-19页 |
| 1 细菌素的分类 | 第16-17页 |
| 2 细菌素的合成与分泌 | 第17页 |
| 3 细菌素的应用研究 | 第17-19页 |
| 3.1 细菌素与食品防腐 | 第17-18页 |
| 3.2 细菌素在医药方面的应用 | 第18-19页 |
| 4 小结 | 第19页 |
| 第二章 一株牦牛源产细菌素的植物乳杆菌分离及鉴定 | 第19-31页 |
| 1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 1.1 菌株与试剂 | 第20页 |
| 1.2 仪器设备 | 第20页 |
| 1.3 乳酸菌的分离纯化 | 第20-21页 |
| 1.4 筛选产细菌素乳酸菌的及鉴定 | 第21-22页 |
| 1.4.1 无细胞发酵上清液的制备 | 第21页 |
| 1.4.2 筛选 | 第21页 |
| 1.4.3 有机酸和过氧化氢排除试验 | 第21页 |
| 1.4.4 蛋白酶消化试验 | 第21页 |
| 1.4.5 产细菌素菌株的鉴定 | 第21-22页 |
| 1.5 对牦牛常见腹泻病原菌抑制的测定 | 第22页 |
| 1.6 生长曲线的测定 | 第22页 |
| 1.6.1 乳酸菌不同生长时间培养液OD值测定 | 第22页 |
| 1.6.2 乳酸菌不同生长时间的活菌计数 | 第22页 |
| 1.7 抗生素敏感试验 | 第22页 |
| 1.8 耐酸和耐胆盐试验 | 第22-23页 |
| 1.9 SWUN5815对Caco-2 细胞的黏附 | 第23页 |
| 1.9.1 SWUN5815菌液准备 | 第23页 |
| 1.9.2 荧光标记SWUN5815 | 第23页 |
| 1.9.3 Caco-2 细胞的培养 | 第23页 |
| 1.9.4 黏附试验 | 第23页 |
| 2 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.1 乳酸菌的分离 | 第23-24页 |
| 2.2 产细菌素乳酸菌的筛选 | 第24页 |
| 2.3 产细菌素菌株的鉴定 | 第24-25页 |
| 2.4 SWUN5815对牦牛源病原菌的抑制结果 | 第25-26页 |
| 2.5 SWUN5815的生长趋势 | 第26-27页 |
| 2.5.1 SWUN5815培养时间与OD600值的关系曲线 | 第26-27页 |
| 2.5.2 SWUN5815对数期OD600值与活菌数的关系 | 第27页 |
| 2.6 SWUN5815抗生素敏感试验结果 | 第27-28页 |
| 2.7 SWUN5815耐酸和耐胆盐能力 | 第28页 |
| 2.8 SWUN5815对Caco-2 细胞的黏附效果 | 第28-29页 |
| 3 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 植物乳杆菌SWUN5815株对小鼠生长性能和肠黏膜免疫的作用 | 第31-35页 |
| 1 材料 | 第31-32页 |
| 1.1 菌株 | 第31页 |
| 1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 1.3 实验动物 | 第31页 |
| 1.4 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2 方法 | 第32页 |
| 2.1 SWUN5815 对小鼠体增重的影响 | 第32页 |
| 2.1.1 实验动物的分组与处理 | 第32页 |
| 2.1.2 小鼠日增重的测定 | 第32页 |
| 2.2 肠黏膜SIgA测定 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-33页 |
| 3.1 SWUN5815对小鼠体增重的影响 | 第32-33页 |
| 3.2 SWUN5815对小鼠小肠黏膜SIgA的影响 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 植物乳杆菌SWUN5815株在体内拮抗沙门菌的作用研究 | 第35-46页 |
| 1 材料与方法 | 第35-38页 |
| 1.1 实验菌株和动物 | 第35-36页 |
| 1.2 主要试剂与仪器 | 第36页 |
| 1.3 菌液的制备 | 第36页 |
| 1.4 实验动物的处理及样本采集 | 第36页 |
| 1.5 检测SWUN5815对感染沙门菌小鼠所致组织病理学变化的影响 | 第36页 |
| 1.6 检测SWUN5815对感染沙门菌小鼠细胞因子的影响 | 第36-38页 |
| 1.6.1 组织RNA的提取 | 第36-37页 |
| 1.6.2 cDNA的制备 | 第37页 |
| 1.6.3 荧光定量PCR的反应体系条件和引物 | 第37-38页 |
| 1.6.4 数据处理 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-44页 |
| 2.1 SWUN5815对感染沙门菌小鼠所致组织病理学变化的影响 | 第38-43页 |
| 2.1.1 48 h各组织病理学变化 | 第38-40页 |
| 2.1.2 96 h各组织病理学变化 | 第40-43页 |
| 2.2 SWUN5815对感染沙门菌小鼠细胞因子的影响 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-46页 |
| 第五章 SWUN5815全基因测序与胞外蛋白分析 | 第46-63页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| 1.1 菌株 | 第46页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第46页 |
| 1.3 提取SWUN5815 DNA | 第46页 |
| 1.4 胞外蛋白的提取 | 第46-47页 |
| 2 结果 | 第47-60页 |
| 2.1 SWUN5815基因组组装效果评价 | 第47页 |
| 2.2 组装结果 | 第47-48页 |
| 2.3 SWUN5815基因组概况 | 第48-50页 |
| 2.3.1 基因组组分分析 | 第48-49页 |
| 2.3.2 编码基因 | 第49页 |
| 2.3.3 重复序列 | 第49-50页 |
| 2.3.4 非编码RNA | 第50页 |
| 2.3.5 基因岛 | 第50页 |
| 2.4 基因功能分析 | 第50-57页 |
| 2.4.1 GO数据库注释 | 第51页 |
| 2.4.2 KEGG数据库注释 | 第51-52页 |
| 2.4.3 COG数据库注释 | 第52-53页 |
| 2.4.4 NR数据库注释 | 第53-55页 |
| 2.4.5 SWUN5815与其它植物乳杆菌共线性分析 | 第55-56页 |
| 2.4.6 遗传进化分析 | 第56-57页 |
| 2.5 蛋白鉴定结果 | 第57-58页 |
| 2.5.1 概述 | 第57-58页 |
| 2.6 蛋白功能注释 | 第58-60页 |
| 2.6.1 GO注释 | 第58页 |
| 2.6.2 COG注释 | 第58-59页 |
| 2.6.3 Pathway注释 | 第59-60页 |
| 3 讨论 | 第60-63页 |
| 3.1 基因组概况与遗传进化分析 | 第60页 |
| 3.2 细菌素相关基因 | 第60-61页 |
| 3.3 抗力性基因 | 第61页 |
| 3.4 免疫基因 | 第61页 |
| 3.5 胞外蛋白 | 第61-63页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 附录 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
