| 中文摘要 | 第7-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 英文缩略词表 | 第15-17页 |
| 1. 前言 | 第17-20页 |
| 2. 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2 试剂和材料 | 第20-22页 |
| 2.3 仪器和设备 | 第22-23页 |
| 3. 实验方法 | 第23-31页 |
| 3.1 AA大鼠模型的诱导 | 第23-24页 |
| 3.2 AA大鼠模型的评价 | 第24-25页 |
| 3.2.1 AA大鼠模型的全身评分 | 第24页 |
| 3.2.2 AA大鼠模型的关节炎症评分 | 第24页 |
| 3.2.3 AA大鼠模型的关节肿胀度评分 | 第24-25页 |
| 3.3 AA大鼠FLS的培养 | 第25-26页 |
| 3.3.1 AA大鼠FLS的原代培养 | 第25页 |
| 3.3.2 AA大鼠FLS的传代培养 | 第25-26页 |
| 3.3.3 AA大鼠FLS的冻存与复苏 | 第26页 |
| 3.4 CCK-8 法测量AA大鼠FLS细胞增殖 | 第26-27页 |
| 3.4.1 不同浓度GE对AA大鼠FLS细胞增殖的作用 | 第26页 |
| 3.4.2 GE（50 μg/mL）与不同浓度ABS对AA大鼠FLS细胞增殖的作用 | 第26-27页 |
| 3.4.3 GE、ABS单用及合用对AA大鼠FLS细胞增殖的作用 | 第27页 |
| 3.5 AA大鼠FLS中IL-1β、IL-17、IL-4 和TGF-β1 的诱生及活性检测 | 第27-28页 |
| 3.5.1 AA大鼠FLS中IL-1β、IL-17、IL-4 和TGF-β1 的诱生 | 第27-28页 |
| 3.5.2 AA大鼠FLS中IL-1β、IL-17、IL-4 和TGF-β1 的ELISA检测 | 第28页 |
| 3.6 蛋白质电泳法检测目标蛋白的含量 | 第28-31页 |
| 3.6.1 FLS悬液中蛋白的提取 | 第28-29页 |
| 3.6.2 蛋白定量 | 第29-30页 |
| 3.6.3 目标蛋白检测 | 第30-31页 |
| 3.7 统计学分析 | 第31页 |
| 4. 结果 | 第31-40页 |
| 4.1 AA大鼠模型的建立与评价 | 第31-33页 |
| 4.1.1 AA大鼠全身评分情况 | 第31-32页 |
| 4.1.2 AA大鼠关节炎指数评分情况 | 第32页 |
| 4.1.3 AA大鼠继发性关节肿胀度的变化 | 第32-33页 |
| 4.2 AA大鼠FLS的形态学观察 | 第33-34页 |
| 4.3 CCK-8 法检测各给药组对AA大鼠FLS细胞增殖的影响 | 第34-37页 |
| 4.3.1 不同浓度GE对AA大鼠FLS细胞增殖的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.2 GE（50 μg/mL）与不同浓度ABS合用对AA大鼠FLS细胞增殖的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.3 GE、ABS单用及合用对AA大鼠FLS细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| 4.4 GE、ABS单用及合用对AA大鼠FLS分泌细胞因子的影响 | 第37-38页 |
| 4.5 GE、ABS单用及合用对FLS中RhoA、p38MAPK、NF-κB及F-actin蛋白表达的影响 | 第38-40页 |
| 5. 讨论 | 第40-44页 |
| 5.1 GE, GE与ABS合用对AA大鼠FLS细胞增殖的调控 | 第40页 |
| 5.2 GE, GE与ABS合用抑制AA大鼠FLS异常增殖可能与调节促炎细胞因子/抗炎细胞因子的平衡有关 | 第40-42页 |
| 5.3 GE, GE与ABS合用抑制AA大鼠FLS异常增殖可能与调节F-actin表达有关 | 第42-44页 |
| 6. 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-54页 |
| 综述 | 第54-64页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 附录 | 第65页 |
