| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-20页 |
| 1.1 前言 | 第15页 |
| 1.2 癌症治疗方法简介 | 第15-19页 |
| 1.2.1 癌症的手术切除法 | 第15-16页 |
| 1.2.2 癌症的化学治疗法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 癌症的免疫治疗法 | 第17-19页 |
| 1.3 T 细胞的分化，活化及凋亡 | 第19-20页 |
| 1.3.1 T 细胞的分化 | 第19页 |
| 1.3.2 T 细胞的活化 | 第19页 |
| 1.3.3 活化 T 细胞的凋亡 | 第19-20页 |
| 1.4 本课题的研究内容及创新点 | 第20页 |
| 1.4.1 本课题的研究内容： | 第20页 |
| 1.4.2 本课题的创新点： | 第20页 |
| 第二章 携带 MUP53 基因的腺病毒的构建 | 第20-30页 |
| 2.1 前言 | 第20-21页 |
| 2.2 实验器材 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.3.1 PDC659-MUP53-PPE3 载体构建 | 第22-25页 |
| 2.3.2 质粒的大量制备 | 第25页 |
| 2.3.3 病毒重组，扩增和纯化 | 第25-27页 |
| 2.4 实验结果 | 第27-30页 |
| 2.4.1 用于质粒 PDC659-MUP53-PPE3 构建的目的片段的电泳结果 | 第27-28页 |
| 2.4.2 重组腺病毒的鉴定 | 第28-30页 |
| 2.4.3 病毒滴度的检测 | 第30页 |
| 2.5 结果分析 | 第30页 |
| 第三章 诱导单核细胞成为成熟的树突状细胞 | 第30-36页 |
| 3.1 前言 | 第30-31页 |
| 3.2 实验器材 | 第31-32页 |
| 3.2.1 主要实验材料 | 第31页 |
| 3.2.2 主要实验器材 | 第31页 |
| 3.2.3 主要实验试剂 | 第31-32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.3.1 从外周血中分离单核细胞 | 第32-33页 |
| 3.3.2 诱导单核细胞成为成熟的树突状细胞（DC） | 第33页 |
| 3.3.3 流式表型检测 | 第33页 |
| 3.4 实验结果 | 第33-35页 |
| 3.5 结果分析 | 第35-36页 |
| 第四章 成熟的树突状细胞（DC）与初始 T 细胞共培养 | 第36-42页 |
| 4.1 前言 | 第36页 |
| 4.2 实验器材 | 第36-37页 |
| 4.2.1 主要实验材料 | 第36页 |
| 4.2.2 主要实验 | 第36-37页 |
| 4.2.3 主要实验试剂 | 第37页 |
| 4.3 实验方法 | 第37-39页 |
| 4.4 实验结果 | 第39-41页 |
| 4.4.1 流式检测细胞 CD3 和 CD8 的表型 | 第39-40页 |
| 4.4.2 流式检测 Treg 细胞（调节性 T 细胞）比例 | 第40页 |
| 4.4.3 Elispot 检测细胞 IFN-γ的分泌 | 第40-41页 |
| 4.5 结果分析 | 第41-42页 |
| 第五章 特异性 T 淋巴细胞的大量扩增 | 第42-49页 |
| 5.1 前言 | 第42页 |
| 5.2 实验器材 | 第42-43页 |
| 5.2.1 主要实验材料 | 第42页 |
| 5.2.2 主要实验 | 第42-43页 |
| 5.2.3 主要实验试剂 | 第43页 |
| 5.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 5.4 实验结果 | 第44-47页 |
| 5.4.1 细胞因子诱导的特异性 T 细胞扩增曲线 | 第44-45页 |
| 5.4.2 流式检测细胞 CD3，CD8 的表型 | 第45页 |
| 5.4.3 流式检测 Treg 细胞（调节性 T 细胞）比例 | 第45-46页 |
| 5.4.4 流式检测 NK 细胞（自然杀伤细胞）比例 | 第46页 |
| 5.4.5 Elispot 检测 IFN-γ的分泌 | 第46-47页 |
| 5.5 结果分析 | 第47-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
