| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、检测正常卵巢组织、卵巢癌组织标本中VEGI、VEGF的表达情况及MVD值 | 第16-26页 |
| 1.1 材料 | 第16-17页 |
| 1.1.1 组织标本 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16页 |
| 1.1.3 主要仪器和设备 | 第16-17页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第17页 |
| 1.2 方法 | 第17-20页 |
| 1.2.1 组织标本制备 | 第17页 |
| 1.2.2 应用免疫组化方法,检测正常卵巢组织、卵巢癌组织标本中VEGI、VEGF的表达及MVD值 | 第17-19页 |
| 1.2.3 免疫组化染色结果的判断 | 第19页 |
| 1.2.4 统计方法 | 第19-20页 |
| 1.3 结果 | 第20-25页 |
| 1.3.1 正常卵巢、卵巢癌组织中VEGI的表达及MVD值 | 第20-23页 |
| 1.3.2 正常卵巢、卵巢癌组织中VEGF的表达及MVD值 | 第23-25页 |
| 1.4 小结 | 第25-26页 |
| 二、重组人VEGF对HUVEC产生VEGI的影响 | 第26-31页 |
| 2.1 材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第26页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第26页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.2 方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 HUVEC的培养 | 第27页 |
| 2.2.2 ELISA法检测VEGI水平 | 第27-28页 |
| 2.2.3 统计方法 | 第28-29页 |
| 2.3 结果 | 第29-30页 |
| 2.3.1 HUVEC细胞的形态 | 第29页 |
| 2.3.2 重组人VEGF蛋白作用于HUVEC后对其表达VEGI的影响 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 三、OVCAR3细胞条件培养基对HUVEC产生VEGI的影响 | 第31-35页 |
| 3.1 材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第31页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第31-32页 |
| 3.1.4 主要试剂的配制 | 第32页 |
| 3.2 方法 | 第32-33页 |
| 3.2.1 培养OVCAR3细胞,制备条件培养基 | 第32页 |
| 3.2.2 HUVEC细胞的培养 | 第32页 |
| 3.2.3 ELISA法检测VEGF、VEGI水平 | 第32-33页 |
| 3.3 结果 | 第33-34页 |
| 3.3.1 缺氧对OVCAR3细胞产生VEGF的影响 | 第33页 |
| 3.3.2 OVCAR3细胞条件培养基作用于HUVEC后对其表达VEGI的影响 | 第33-34页 |
| 3.4 小结 | 第34-35页 |
| 四、VEGF对NF-κB蛋白表达的影响 | 第35-41页 |
| 4.1 材料 | 第35-37页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第35页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第35页 |
| 4.1.3 主要溶液及缓冲液 | 第35-37页 |
| 4.1.4 主要仪器和设备 | 第37页 |
| 4.2 方法 | 第37-40页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第37-38页 |
| 4.2.2 细胞样本制备 | 第38页 |
| 4.2.3 细胞核蛋白提取及蛋白定量 | 第38-39页 |
| 4.2.4 Western blotting检测对HUVEC细胞NF-κB蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| 4.3 结果 | 第40页 |
| 4.4 小结 | 第40-41页 |
| 讨论 | 第41-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-61页 |
| 综述参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
