| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 立题依据 | 第11-13页 |
| 第一章 不同酶辅助提取枸杞多糖工艺优化及体外抗氧化活性研究 | 第13-37页 |
| 1 枸杞多糖及总黄酮含量测定方法的建立 | 第13-19页 |
| 1.1 仪器、试剂与药材 | 第13页 |
| 1.2 枸杞多糖含量测定方法的建立 | 第13-17页 |
| 1.3 枸杞总黄酮含量测定方法的建立 | 第17-19页 |
| 2 传统提取枸杞多糖工艺参数的优选 | 第19-21页 |
| 3 不同酶辅助提取枸杞多糖工艺优选及体外抗氧化活性研究 | 第21-35页 |
| 3.1 纤维素酶辅助提取枸杞多糖工艺参数的优选及体外抗氧化活性研究 | 第21-25页 |
| 3.2 果胶酶辅助提取枸杞多糖工艺参数的优选及体外抗氧化活性的研究 | 第25-28页 |
| 3.3 木瓜蛋白酶辅助提取枸杞多糖工艺参数的优选及体外抗氧化活性的研究 | 第28-31页 |
| 3.4 木聚糖酶辅助提取枸杞多糖工艺参数的优选及体外抗氧化活性的研究 | 第31-35页 |
| 4 不同酶辅助提取法与传统水提法两种方法下枸杞多糖得率的比较 | 第35页 |
| 5 不同酶解提取物与传统提取物黏度分析 | 第35-36页 |
| 6 不同酶解提取物与传统提取物体外抗氧化活性比较 | 第36-37页 |
| 第二章 复合酶辅助提取枸杞多糖及总黄酮工艺研究 | 第37-44页 |
| 1 复合酶辅助提取枸杞多糖工艺参数优选 | 第37-40页 |
| 1.1 pH单因素考察 | 第37页 |
| 1.2 正交设计优选复合酶酶解辅助提取枸杞多糖工艺条件 | 第37-40页 |
| 2 正交设计优选传统提取枸杞总黄酮工艺条件 | 第40-41页 |
| 2.1 正交实验结果分析 | 第41页 |
| 3 复合酶辅助提取枸杞总黄酮工艺参数的优选 | 第41-44页 |
| 3.1 实验结果分析 | 第42-43页 |
| 3.2 工艺参数验证试验结果 | 第43-44页 |
| 第三章 星点设计-效应面法优选枸杞多糖超滤纯化工艺 | 第44-50页 |
| 1 材料与仪器 | 第44页 |
| 1.1 材料 | 第44页 |
| 1.2 仪器 | 第44页 |
| 2 实验方法与结果 | 第44-50页 |
| 2.1 样品的制备 | 第44-45页 |
| 2.2 药液的预处理 | 第45页 |
| 2.3 星点设计-效应面法优选超滤工艺参数 | 第45-49页 |
| 2.3.1 星点设计实验方案 | 第45-49页 |
| 2.4 工艺参数验证试验 | 第49页 |
| 2.5 澄明度考察 | 第49页 |
| 2.6 复溶性考察 | 第49-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-52页 |
| 1 主要结论 | 第50-51页 |
| 2 问题和展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-53页 |
| 文献综述 | 第53-67页 |
| 1 枸杞研究概况 | 第53页 |
| 2 枸杞多糖研究概况 | 第53-59页 |
| 2.1 枸杞多糖的药理作用 | 第53-56页 |
| 2.2 枸杞多糖提取方法 | 第56-59页 |
| 3 枸杞总黄酮研究概况 | 第59-62页 |
| 3.1 枸杞总黄酮的药理作用 | 第59-61页 |
| 3.2 枸杞总黄酮的提取方法 | 第61-62页 |
| 4 超滤 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第68页 |
