| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 细胞膜结构简介 | 第11页 |
| 1.2 细胞表面工程中细胞膜的修饰策略 | 第11-13页 |
| 1.3 细胞表面工程的应用 | 第13-15页 |
| 1.4 细胞膜荧光成像 | 第15-18页 |
| 1.5 问题的提出和解决策略 | 第18-19页 |
| 1.6 论文各部分工作的主要内容 | 第19-20页 |
| 参考文献 | 第20-27页 |
| 第二章 单位点锚定策略用于基于量子点的抗光漂白细胞膜成像 | 第27-45页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-30页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 量子点的表征 | 第28页 |
| 2.2.3 细胞培养与毒性评价 | 第28-29页 |
| 2.2.4 共聚焦荧光成像研究基于量子点的细胞膜成像和细胞内吞 | 第29页 |
| 2.2.5 流式细胞定量研究量子点内吞 | 第29页 |
| 2.2.6 细胞膜成像中的细胞固定 | 第29页 |
| 2.2.7 细胞膜成像时的光稳定性评价 | 第29-30页 |
| 2.2.8 内吞机制研究 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-40页 |
| 2.3.1 细胞表面工程增强量子点与细胞的相互作用(吸附和内吞) | 第30-34页 |
| 2.3.2 细胞表面工程用于细胞膜成像 | 第34-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 第三章 多位点锚定策略用于减少细胞对细胞膜染料的内吞 | 第45-61页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 实验部分 | 第46-49页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第46页 |
| 3.2.2 GC-PEG chol-FITC的合成 | 第46-47页 |
| 3.2.3 核磁共振氢谱(~1H NMR)表征 | 第47-49页 |
| 3.2.4 大小和形貌表征 | 第49页 |
| 3.2.5 细胞毒性评价 | 第49页 |
| 3.2.6 荧光共聚焦 | 第49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 3.3.1 GC-PEG chol-FITC的设计 | 第49-50页 |
| 3.3.2 大小和形貌特性 | 第50页 |
| 3.3.3 低细胞毒性 | 第50-52页 |
| 3.3.4 共聚焦成像 | 第52页 |
| 3.3.5 染色影响因素和条件优化 | 第52-56页 |
| 3.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 第四章 多位点锚定双重修饰策略用于细胞膜长时间成像 | 第61-73页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 实验部分 | 第62-64页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第62页 |
| 4.2.2 GC-PEG chol-FITC的合成 | 第62页 |
| 4.2.3 GC-PEG chol-biotin的合成 | 第62-63页 |
| 4.2.4 Avidin-FITC的合成 | 第63页 |
| 4.2.5 试剂的尺寸表征 | 第63页 |
| 4.2.6 细胞培养和细胞毒性评价 | 第63页 |
| 4.2.7 荧光共聚焦实验 | 第63-64页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第64-70页 |
| 4.3.1 成像试剂的设计与合成 | 第64-65页 |
| 4.3.2 尺寸表征和毒性评价 | 第65页 |
| 4.3.3 细胞膜成像 | 第65-69页 |
| 4.3.4 长时间实时监测细胞凋亡时细胞膜的形态变化 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 第五章 多位点锚定分子用于动物细胞膜和真菌、细菌细胞壁的普适性成像 | 第73-95页 |
| 5.1 引言 | 第73-74页 |
| 5.2 实验部分 | 第74-77页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第74-75页 |
| 5.2.2 试剂合成 | 第75页 |
| 5.2.3 细胞培养 | 第75页 |
| 5.2.4 zeta电位和粒径的测定 | 第75-76页 |
| 5.2.5 细胞染色和共聚焦成像 | 第76页 |
| 5.2.6 流式定量分析 | 第76页 |
| 5.2.7 毒性评价 | 第76-77页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第77-88页 |
| 5.3.1 染色试剂与细胞表面的电荷特性 | 第77-78页 |
| 5.3.2 哺乳动物细胞的细胞膜染色 | 第78-79页 |
| 5.3.3 细菌细胞壁染色 | 第79-81页 |
| 5.3.4 真菌细胞壁的染色 | 第81-83页 |
| 5.3.5 染色条件的优化 | 第83-85页 |
| 5.3.6 染色试剂的细胞毒性评价 | 第85-86页 |
| 5.3.7 染色原理总结 | 第86-88页 |
| 5.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 第六章 多位点锚定分子用于免疫荧光染色中的抗透化成像 | 第95-107页 |
| 6.1 引言 | 第95-96页 |
| 6.2 实验部分 | 第96-97页 |
| 6.2.1 材料与试剂 | 第96页 |
| 6.2.2 细胞染色、固定和透化 | 第96-97页 |
| 6.2.3 4% PFA引发多位点试剂的聚集 | 第97页 |
| 6.2.4 免疫染色和共聚焦成像 | 第97页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第97-103页 |
| 6.3.1 GC-PEG chol-FITC具有抗透化能力 | 第97-99页 |
| 6.3.2 氨基交联作用和大分子滞留作用 | 第99-101页 |
| 6.3.3 细胞骨架与细胞膜的同时成像 | 第101-102页 |
| 6.3.4 其他具有抗透化能力的细胞膜染色试剂 | 第102-103页 |
| 6.4 本章小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-107页 |
| 第七章 总结与展望 | 第107-111页 |
| 7.1 论文工作总结 | 第107-109页 |
| 7.2 后续工作展望 | 第109-111页 |
| 博士期间研究成果 | 第111-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
