| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第16-37页 |
| 1.1 课题背景及研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 1.2 化学修饰电极的发展状况 | 第17-23页 |
| 1.2.1 化学修饰电极的基底类型 | 第18-19页 |
| 1.2.2 修饰电极材料及其表征手段 | 第19-20页 |
| 1.2.3 化学修饰电极的制备技术 | 第20-22页 |
| 1.2.4 含羧基类有机物修饰电极 | 第22-23页 |
| 1.3 细胞电化学在生物毒性检测中的应用 | 第23-29页 |
| 1.3.1 细胞电化学分析技术 | 第23-25页 |
| 1.3.2 细胞电化学传感器及其生物毒性检测 | 第25-27页 |
| 1.3.3 细胞电化学在环境毒物检测中的应用 | 第27-28页 |
| 1.3.4 细胞电化学在药物毒性评价中的应用 | 第28-29页 |
| 1.4 肿瘤细胞电化学研究进展 | 第29-35页 |
| 1.4.1 基于肿瘤标志物检测的细胞电化学 | 第29-32页 |
| 1.4.2 基于细胞伏安行为研究的细胞电化学 | 第32-35页 |
| 1.5 本文的主要研究内容 | 第35-37页 |
| 第2章 实验材料和方法 | 第37-46页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第37-39页 |
| 2.1.1 实验试剂和材料 | 第37-38页 |
| 2.1.2 实验仪器和设备 | 第38-39页 |
| 2.2 修饰电极的制备和电化学微检测系统构建 | 第39-41页 |
| 2.2.1 钙黄绿素修饰玻碳电极的制备 | 第39页 |
| 2.2.2 苏氨酸修饰铅芯电极的制备 | 第39-40页 |
| 2.2.3 电化学微检测系统构建 | 第40页 |
| 2.2.4 修饰铅芯电极阵列的制备 | 第40-41页 |
| 2.3 MCF-7 细胞培养和毒性试验 | 第41-44页 |
| 2.3.1 MCF-7 细胞培养 | 第41-44页 |
| 2.3.2 细胞毒性试验 | 第44页 |
| 2.3.3 细胞裂解液的制备 | 第44页 |
| 2.4 表征和测试方法 | 第44-46页 |
| 2.4.1 SEM测试 | 第44-45页 |
| 2.4.2 电化学测试 | 第45页 |
| 2.4.3 MTT试验 | 第45-46页 |
| 第3章 PCA/GCE的构建及催化性能研究 | 第46-71页 |
| 3.1 引言 | 第46页 |
| 3.2 PCA/GCE构建中工艺参数的选择确定 | 第46-50页 |
| 3.2.1 循环扫描圈数的确定 | 第47-48页 |
| 3.2.2 制备溶液pH值的确定 | 第48页 |
| 3.2.3 扫描起始和终止电位的确定 | 第48-50页 |
| 3.3 PCA/GCE的表征 | 第50-53页 |
| 3.3.1 钙黄绿素聚合的循环伏安曲线 | 第50-51页 |
| 3.3.2 PCA/GCE的形貌表征 | 第51-52页 |
| 3.3.3 PCA/GCE的电化学表征 | 第52-53页 |
| 3.4 PCA/GCE用于检测嘌呤伏安行为的研究 | 第53-63页 |
| 3.4.1 嘌呤在PCA/GCE上的伏安行为 | 第53-54页 |
| 3.4.2 嘌呤在PCA/GCE上的反应动力学研究 | 第54-61页 |
| 3.4.3 不同浓度嘌呤的伏安响应 | 第61-63页 |
| 3.5 尿酸和混合嘌呤的伏安行为研究 | 第63-69页 |
| 3.5.1 尿酸和嘌呤在PCA/GCE上的伏安行为 | 第63-64页 |
| 3.5.2 扫描速率对尿酸和嘌呤伏安行为的影响 | 第64页 |
| 3.5.3 pH值对尿酸和嘌呤伏安行为的影响 | 第64-66页 |
| 3.5.4 尿酸和嘌呤在PCA/GCE上的选择性测定 | 第66-67页 |
| 3.5.5 尿酸和嘌呤在PCA/GCE上的同时测定 | 第67-68页 |
| 3.5.6 PCA/GCE的重现性和稳定性研究 | 第68页 |
| 3.5.7 PCA/GCE的干扰性研究 | 第68-69页 |
| 3.5.8 PCA/GCE在实际尿样分析中的应用 | 第69页 |
| 3.6 本章小结 | 第69-71页 |
| 第4章 基于PCA/GCE的抗癌药物细胞毒性效应研究 | 第71-82页 |
| 4.1 引言 | 第71页 |
| 4.2 MCF-7 细胞在PCA/GCE上的伏安行为研究 | 第71-77页 |
| 4.2.1 MCF-7 细胞在PCA/GCE上的伏安行为 | 第71-73页 |
| 4.2.2 pH对MCF-7 细胞伏安行为的影响 | 第73-75页 |
| 4.2.3 富集电位对MCF-7 细胞伏安行为的影响 | 第75-76页 |
| 4.2.4 富集时间对MCF-7 细胞伏安行为的影响 | 第76-77页 |
| 4.3 细胞浓度与MCF-7 细胞电化学信号的响应关系 | 第77-79页 |
| 4.4 环磷酰胺对MCF-7 细胞的毒性效应评价 | 第79-81页 |
| 4.4.1 环磷酰胺作用剂量对MCF-7 细胞的毒性效应 | 第79-80页 |
| 4.4.2 环磷酰胺的细胞毒性曲线 | 第80-81页 |
| 4.5 本章小结 | 第81-82页 |
| 第5章 基于PT/PGE电化学微检测系统细胞毒性研究 | 第82-108页 |
| 5.1 引言 | 第82页 |
| 5.2 PT/PGE的制备及催化性能研究 | 第82-94页 |
| 5.2.1 PT/PGE构建中实验参数的研究确定 | 第82-85页 |
| 5.2.2 PT/PGE的表征 | 第85-88页 |
| 5.2.3 PT/PGE的催化性能研究 | 第88-94页 |
| 5.3 电化学微检测系统电化学性能的研究 | 第94-99页 |
| 5.3.1 电化学微检测系统的可行性研究 | 第94-95页 |
| 5.3.2 电化学微检测系统的重现性研究 | 第95-97页 |
| 5.3.3 电化学微检测系统的稳定性研究 | 第97-98页 |
| 5.3.4 电化学微检测系统的灵敏度研究 | 第98-99页 |
| 5.4 基于微检测系统的药物毒性效应评估 | 第99-106页 |
| 5.4.1 MCF-7 细胞在微检测系统上的电化学行为研究 | 第99-104页 |
| 5.4.2 细胞浓度对MCF-7 细胞伏安行为的影响 | 第104-105页 |
| 5.4.3 基于微检测系统评价CTX的细胞毒性效应 | 第105-106页 |
| 5.5 本章小结 | 第106-108页 |
| 第6章 基于MT/PGEA的电化学微检测系统的构建 | 第108-129页 |
| 6.1 引言 | 第108页 |
| 6.2 MT/PGEA的制备工艺优化 | 第108-113页 |
| 6.2.1 WMNTs浸泡时间的选择 | 第108-109页 |
| 6.2.2 循环扫描圈数的选择 | 第109-110页 |
| 6.2.3 电极长度的选择 | 第110-111页 |
| 6.2.4 电极位点间距的选择 | 第111-112页 |
| 6.2.5 阵列电极数量的影响 | 第112-113页 |
| 6.3 MT/PGEA的表征 | 第113页 |
| 6.4 MT/PGEA对嘌呤氧化的催化性研究 | 第113-117页 |
| 6.4.1 黄嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为研究 | 第113-114页 |
| 6.4.2 鸟嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为研究 | 第114-115页 |
| 6.4.3 腺嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为研究 | 第115-116页 |
| 6.4.4 次黄嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为研究 | 第116-117页 |
| 6.5 嘌呤在MT/PGEA上的检测限的确定 | 第117-119页 |
| 6.5.1 黄嘌呤在MT/PGEA上的检测限 | 第117页 |
| 6.5.2 鸟嘌呤在MT/PGEA上的检测限 | 第117-118页 |
| 6.5.3 腺嘌呤在MT/PGEA上的检测限 | 第118-119页 |
| 6.5.4 次黄嘌呤在MT/PGEA上的检测限 | 第119页 |
| 6.6 嘌呤在MT/PGEA上的反应动力学研究 | 第119-124页 |
| 6.7 尿酸和嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为研究 | 第124-128页 |
| 6.7.1 尿酸和混合嘌呤在MT/PGEA上的伏安行为 | 第124-125页 |
| 6.7.2 扫速对尿酸和混合嘌呤伏安行为的影响 | 第125-126页 |
| 6.7.3 尿酸和混合嘌呤在MT/PGEA上的同时测定 | 第126-128页 |
| 6.8 本章小结 | 第128-129页 |
| 结论 | 第129-130页 |
| 创新点 | 第130页 |
| 展望 | 第130-132页 |
| 参考文献 | 第132-147页 |
| 附录一 | 第147-148页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及其它成果 | 第148-150页 |
| 致谢 | 第150-152页 |
| 个人简历 | 第152页 |
