| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 伪狂犬病（Aujeszky’s disease）概况 | 第12-15页 |
| 1.1.1 病原学 | 第12-13页 |
| 1.1.2 分子生物学特点 | 第13-14页 |
| 1.1.3 感染特点 | 第14页 |
| 1.1.4 流行病学 | 第14页 |
| 1.1.5 临床症状 | 第14-15页 |
| 1.1.6 预防控制 | 第15页 |
| 1.2 小胶质细胞的形态、功能与表型变化 | 第15-18页 |
| 1.2.1 天然免疫 | 第15页 |
| 1.2.2 Microglia的形态和功能 | 第15-16页 |
| 1.2.3 Microglia增殖 | 第16-18页 |
| 1.2.4 Microglia极化 | 第18页 |
| 1.2.5 PRV感染诱导的细胞动态变化 | 第18页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 PRV人工感染小鼠实验模型的建立 | 第19-27页 |
| 2.1 材料和方法 | 第19-23页 |
| 2.1.1 病毒株 | 第19页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂与仪器 | 第19页 |
| 2.1.4 实验设计 | 第19页 |
| 2.1.5 病毒TCID50的测定 | 第19-20页 |
| 2.1.6 临床症状观察 | 第20页 |
| 2.1.7 病理切片的制备 | 第20-21页 |
| 2.1.8 病理组织学观察 | 第21-22页 |
| 2.1.9 免疫组织化学染色 | 第22-23页 |
| 2.1.10数据分析 | 第23页 |
| 2.2 结果 | 第23-26页 |
| 2.2.1 人工感染不同剂量的PRV后小鼠存活率 | 第23-24页 |
| 2.2.2 小鼠脑组织病理学观察 | 第24-26页 |
| 2.2.3 PRV免疫组化染色 | 第26页 |
| 2.3 讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 PRV感染诱导的Microglia的增殖与活化 | 第27-35页 |
| 3.1 材料和方法 | 第27-30页 |
| 3.1.1 主要试剂和仪器 | 第27页 |
| 3.1.2 实验设计 | 第27页 |
| 3.1.3 激光共聚焦 | 第27-28页 |
| 3.1.4 免疫磁珠法提取Microglia | 第28-29页 |
| 3.1.5 流式细胞术 | 第29页 |
| 3.1.6 数据分析 | 第29-30页 |
| 3.2 结果 | 第30-33页 |
| 3.2.1 PRV感染诱导Microglia增殖 | 第30-31页 |
| 3.2.1.1 PCNA标记增殖细胞 | 第30页 |
| 3.2.1.2 PCNA和Iba1标记增殖Microglia | 第30-31页 |
| 3.2.2 PRV感染诱导Microglia活化 | 第31-33页 |
| 3.2.2.1 Iba1免疫组化方法分析microglia形态 | 第31-32页 |
| 3.2.2.2 CD45抗体标记活化Microglia | 第32-33页 |
| 3.2.3 Microglia吞噬PRV粒子 | 第33页 |
| 3.3 讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 PRV感染诱导的增殖Microglia来源的分析 | 第35-43页 |
| 4.1 材料和方法 | 第35-36页 |
| 4.1.1 主要试剂和仪器 | 第35页 |
| 4.1.2 实验设计 | 第35-36页 |
| 4.1.3 BrdU免疫组化 | 第36页 |
| 4.1.4 流式细胞术 | 第36页 |
| 4.1.5 数据统计 | 第36页 |
| 4.2 结果 | 第36-41页 |
| 4.2.1 BrdU免疫组化观察 | 第36-37页 |
| 4.2.2 BrdU流式细胞术检测结果 | 第37-38页 |
| 4.2.3 PRV人工感染小鼠后CD11b+Gr1+CD45hi数量增多 | 第38-39页 |
| 4.2.4 PRV人工感染小鼠后CD11b+CD45hi Ly6G+细胞数量无变化 | 第39-40页 |
| 4.2.5 PRV人工感染小鼠后CD11b+CD45hi Ly6Chi细胞数量显著增多 | 第40-41页 |
| 4.3 讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 PRV感染诱导的Microglia极化状态的分析 | 第43-49页 |
| 5.1 材料和方法 | 第43-45页 |
| 5.1.1 主要试剂和仪器 | 第43页 |
| 5.1.2 实验设计 | 第43页 |
| 5.1.3 引物设计 | 第43-44页 |
| 5.1.4 M1型和M2型特异性因子mRNA表达水平的检测 | 第44-45页 |
| 5.1.5 琼脂糖凝胶电泳 | 第45页 |
| 5.2 结果 | 第45-47页 |
| 5.2.1 PRV人工感染后M1型细胞因子表达量升高 | 第45-46页 |
| 5.2.2 PRV人工感染后M2型细胞因子表达量呈升高趋势 | 第46-47页 |
| 5.3 讨论 | 第47-49页 |
| 第六章 全文结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
