| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第14-21页 |
| 1.1 抑郁症 | 第14页 |
| 1.2 关于抑郁症假说 | 第14-16页 |
| 1.2.1 单胺类缺乏学说 | 第14页 |
| 1.2.2 HPA轴功能障碍假说 | 第14-15页 |
| 1.2.3 神经营养因子假说 | 第15页 |
| 1.2.4 免疫炎症假说 | 第15-16页 |
| 1.3 LPS、炎症与抑郁症 | 第16页 |
| 1.4 n-3 和n-6 不饱和脂肪酸、炎症与抑郁症 | 第16-18页 |
| 1.4.1 多不饱和脂肪酸 | 第16页 |
| 1.4.2 n-3 和n-6 PUFAs与炎症 | 第16-17页 |
| 1.4.3 n-6 和n-3 PUFAs与抑郁症 | 第17-18页 |
| 1.5 Fat-1 小鼠模型 | 第18页 |
| 1.6 研究的目的意义与研究的主要内容 | 第18-21页 |
| 1.6.1 研究的目的意义 | 第18-19页 |
| 1.6.2 研究的主要内容 | 第19-20页 |
| 1.6.3 研究技术路线 | 第20-21页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第21-23页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.3 实验仪器 | 第22-23页 |
| 3 实验方法 | 第23-34页 |
| 3.1 实验动物的繁殖 | 第23页 |
| 3.2 转基因小鼠的基因型鉴定 | 第23-24页 |
| 3.2.1 小鼠基因组DNA的提取 | 第23页 |
| 3.2.2 PCR鉴定小鼠基因型 | 第23-24页 |
| 3.3 实验动物侧脑室手术及实验分组 | 第24-25页 |
| 3.4 行为学实验方法 | 第25-27页 |
| 3.4.1 糖水偏好实验方法 | 第25页 |
| 3.4.2 小鼠悬尾实验方法 | 第25-26页 |
| 3.4.3 强迫游泳实验方法 | 第26页 |
| 3.4.4 旷场实验方法 | 第26页 |
| 3.4.5 高架迷宫实验 | 第26-27页 |
| 3.5 外周免疫细胞及外周血清炎症细胞因子测定实验方法 | 第27页 |
| 3.5.1 巨噬细胞吞噬能力实验方法 | 第27页 |
| 3.5.2 巨噬细胞MTT增殖活力测定方法 | 第27页 |
| 3.5.3 外周血清炎症因子IL-1β 及皮质酮激素测定方法 | 第27页 |
| 3.6 小鼠脑组织n-3 PUFAs和n-6 PUFAs的含量及比例测定实验方法 | 第27-28页 |
| 3.6.1 大脑脂肪酸提取及甲酯化方法 | 第27-28页 |
| 3.6.2 气相色谱测定脂肪酸组分及含量实验方法 | 第28页 |
| 3.7 海马组织炎症因子含量测定方法 | 第28-29页 |
| 3.7.1 总蛋白的提取及含量测定 | 第28-29页 |
| 3.7.2 炎症因子含量的测定 | 第29页 |
| 3.8 荧光定量PCR检测海马组织mRNA相对表达实验方法 | 第29-31页 |
| 3.8.1 组织总RNA抽提方法 | 第29页 |
| 3.8.2. 琼脂糖凝胶电泳检测总RNA的质量 | 第29页 |
| 3.8.3 反转录实验步骤 | 第29-30页 |
| 3.8.4 荧光定量PCR实验步骤 | 第30页 |
| 3.8.5 荧光定量结果表示 | 第30-31页 |
| 3.8.6 引物序列 | 第31页 |
| 3.9 Western Blot检测海马组织相关蛋白表达实验方法 | 第31-34页 |
| 3.9.1 蛋白质样品的制备 | 第31-32页 |
| 3.9.2 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32-33页 |
| 3.9.3 转膜 | 第33页 |
| 3.9.4 封闭及免疫反应 | 第33页 |
| 3.9.5 化学发光显色 | 第33-34页 |
| 4 实验结果 | 第34-49页 |
| 4.1 Fat-1 转基因小鼠的基因型鉴定 | 第34页 |
| 4.2 小鼠脑组织n-3 和n-6 PUFAs的测定 | 第34-35页 |
| 4.3 行为学实验结果 | 第35-38页 |
| 4.3.1 Fat-1 小鼠对LPS诱导的糖水偏好度的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.2 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠悬尾不动时间的影响 | 第36页 |
| 4.3.3 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠强迫游泳不动时间的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.4 Fat-1 小鼠对LPS诱导的旷场迷宫中行为的影响 | 第37页 |
| 4.3.5 Fat-1 小鼠对LPS诱导的高架迷宫中行为的影响 | 第37-38页 |
| 4.4 外周激素及免疫变化测定实验结果 | 第38-41页 |
| 4.4.1 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠巨噬细胞活性的影响 | 第39页 |
| 4.4.2 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第39-40页 |
| 4.4.3 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠外周血清中IL-1β 表达水平的影响 | 第40页 |
| 4.4.4 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠外周血清中皮质酮表达水平的影响 | 第40-41页 |
| 4.5 海马组织炎症因子表达的变化实验结果 | 第41-43页 |
| 4.5.1 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠M1相关炎症因子的影响 | 第41-42页 |
| 4.5.2 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠M2相关炎症因子的影响 | 第42页 |
| 4.5.3 Fat-1 小鼠对LPS诱导的小鼠iNOS和NO的影响 | 第42-43页 |
| 4.6 海马组织基因和蛋白表达实验结果 | 第43-49页 |
| 4.6.1 小胶质细胞表型M1和M2表型变化结果 | 第43-45页 |
| 4.6.2 神经营养相关表达的变化结果 | 第45-49页 |
| 5 讨论 | 第49-55页 |
| 5.1 抑郁症与行为学改变及PUFAs的改善作用 | 第49页 |
| 5.2 抑郁症与外周免疫及PUFAs的改善作用 | 第49-51页 |
| 5.3 抑郁症与小胶质细胞炎症反应及PUFAs的改善作用 | 第51-53页 |
| 5.4 抑郁症与神经营养因子及PUFAs的改善作用 | 第53-55页 |
| 6 结论与展望 | 第55-56页 |
| 6.1 结论 | 第55页 |
| 6.2 创新点 | 第55页 |
| 6.3 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者简介 | 第72-73页 |
| 导师简介 | 第73页 |
