| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 一、PGMA微球的制备及其应用 | 第13-33页 |
| 1.1 试剂及仪器 | 第14-15页 |
| 1.1.1 试剂 | 第14页 |
| 1.1.2 仪器 | 第14-15页 |
| 1.2 试验方法 | 第15-19页 |
| 1.2.1 原料预处理 | 第15-16页 |
| 1.2.2 PGMA微球的纯化 | 第16页 |
| 1.2.3 PGMA微球制备影响因素考察 | 第16-18页 |
| 1.2.4 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的制备及表征 | 第18-19页 |
| 1.2.5 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的应用 | 第19页 |
| 1.3 结果 | 第19-29页 |
| 1.3.1 原料预处理结果与意义 | 第19-20页 |
| 1.3.2 PGMA微球纯化结果与意义 | 第20-21页 |
| 1.3.3 PGMA微球制备影响因素考察 | 第21-27页 |
| 1.3.4 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的制备及表征 | 第27-28页 |
| 1.3.5 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的应用 | 第28-29页 |
| 1.4 讨论 | 第29-32页 |
| 1.4.1 PGMA微球制备影响因素 | 第29-31页 |
| 1.4.2 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的表征 | 第31页 |
| 1.4.3 赖氨酸固定化的PGMA NPs涂层的毛细管柱的应用 | 第31-32页 |
| 1.5 小结 | 第32-33页 |
| 二、MNPs的制备及在细胞分离中的应用 | 第33-55页 |
| 2.1 试剂及仪器 | 第34-35页 |
| 2.1.1 试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.2 仪器 | 第35页 |
| 2.2 试验方法 | 第35-40页 |
| 2.2.1 对叠氮苯甲酰肼的合成及纯化 | 第35-37页 |
| 2.2.2 羧化Fe3O4 MNPs的制备 | 第37页 |
| 2.2.3 MNPs的功能基化改性 | 第37页 |
| 2.2.4 利妥昔单抗的前处理 | 第37-38页 |
| 2.2.5 利妥昔单抗固定化于MNPs | 第38-39页 |
| 2.2.6 MNPs性能表征及结构鉴定 | 第39-40页 |
| 2.2.7 免疫磁分离细胞 | 第40页 |
| 2.3 结果 | 第40-51页 |
| 2.3.1 对叠氮苯甲酰肼的合成和纯化 | 第40-44页 |
| 2.3.2 羧化Fe3O4 MNPs制备条件的考察和优化 | 第44-47页 |
| 2.3.3 羧化MNPs的结构形貌及性能的表征 | 第47-50页 |
| 2.3.4 不同偶联抗体方法的考察 | 第50页 |
| 2.3.5 免疫磁分离细胞 | 第50-51页 |
| 2.4 讨论 | 第51-54页 |
| 2.4.1 对叠氮苯甲酰肼的合成及纯化 | 第51-53页 |
| 2.4.2 MNPs的结构形貌及性能的表征 | 第53页 |
| 2.4.3 免疫磁分离细胞 | 第53-54页 |
| 2.5 小结 | 第54-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第61-62页 |
| 附录 | 第62-63页 |
| 综述 高分子微球的制备及应用研究 | 第63-77页 |
| 综述参考文献 | 第73-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
