摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
文献综述 | 第13-35页 |
第一章 猪传染性胃肠炎病毒研究进展 | 第13-22页 |
1.1 猪传染性胃肠炎病毒概述 | 第13页 |
1.2 TGEV的形态学特征和理化特性 | 第13-14页 |
1.3 TGEV基因组结构及编码蛋白 | 第14-15页 |
1.4 TGEV蛋白及功能 | 第15-16页 |
1.4.1 TGEV结构蛋白与功能 | 第15-16页 |
1.4.2 TGEV非结构蛋白与功能 | 第16页 |
1.5 TGEV致病机理 | 第16-20页 |
1.5.1 TGEV组织嗜性和宿主细胞 | 第16-17页 |
1.5.2 TGEV受体 | 第17页 |
1.5.3 TGEV和宿主细胞的相互作用 | 第17-19页 |
1.5.4 TGEV致病机理 | 第19-20页 |
1.6 TGEV的抗原性、变异性 | 第20-22页 |
第二章 蛋白质组学在病毒感染中的应用进展 | 第22-35页 |
2.1 蛋白质组学概述 | 第22-23页 |
2.1.1 蛋白质组的含义 | 第22页 |
2.1.2 蛋白质组学研究范围 | 第22页 |
2.1.3 蛋白质组学国内外研究概况 | 第22-23页 |
2.2 蛋白质组学研究主要技术 | 第23-30页 |
2.2.1 二维凝胶电泳技术 | 第23页 |
2.2.2 荧光差异凝胶电泳技术 | 第23-24页 |
2.2.3 液相色谱技术 | 第24-25页 |
2.2.4 质谱技术与蛋白质鉴定 | 第25-26页 |
2.2.5 同位素标记的蛋白质组学定量技术 | 第26-29页 |
2.2.6 蛋白质组学中的生物信息学分析 | 第29-30页 |
2.3 病毒感染蛋白质组学研究 | 第30-34页 |
2.3.1 病毒感染蛋白质组学研究常用技术 | 第30-31页 |
2.3.2 猪主要病毒感染蛋白质组学研究 | 第31-34页 |
2.4 展望 | 第34-35页 |
试验研究 | 第35-93页 |
第三章 猪传染性胃肠炎病毒感染ST细胞的差异蛋白质鉴定 | 第35-60页 |
3.1 材料与方法 | 第35-42页 |
3.1.1 材料 | 第35-37页 |
3.1.2 方法 | 第37-42页 |
3.2 结果 | 第42-45页 |
3.2.1 病毒感染细胞的形态学变化 | 第42页 |
3.2.2 RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测结果 | 第42-43页 |
3.2.3 质谱鉴定和统计分析结果 | 第43-45页 |
3.3 讨论 | 第45-47页 |
3.4 小结 | 第47-60页 |
第四章 猪传染性胃肠炎病毒感染ST细胞差异表达蛋白质的生物信息学分析 | 第60-82页 |
4.1 材料与方法 | 第60-64页 |
4.1.1 外部数据库蛋白质信息获取 | 第60页 |
4.1.2 GO功能注释和分类 | 第60-61页 |
4.1.3 差异蛋白GO富集分析 | 第61页 |
4.1.4 差异蛋白KEGG生物通路富集分析 | 第61-63页 |
4.1.5 差异蛋白质相互作用分析 | 第63-64页 |
4.2 结果 | 第64-76页 |
4.2.1 GO功能注释和分类结果 | 第64页 |
4.2.2 GO富集分析结果 | 第64-65页 |
4.2.3 KEGG生物通路分析结果 | 第65-73页 |
4.2.4 差异蛋白质相互作用分析结果 | 第73-76页 |
4.3 讨论 | 第76-81页 |
4.4 小结 | 第81-82页 |
第五章 感染猪传染性胃肠炎病毒的ST细胞差异蛋白验证 | 第82-93页 |
5.1 材料与方法 | 第82-85页 |
5.1.1 材料 | 第82-84页 |
5.1.2 方法 | 第84-85页 |
5.2 结果 | 第85-88页 |
5.2.1 HSP90α 验证结果 | 第85-86页 |
5.2.2 Caspase8验证结果 | 第86-87页 |
5.2.3 TGFB1/TGF-β1 验证结果 | 第87-88页 |
5.2.4 DDX58验证结果 | 第88页 |
5.3 讨论 | 第88-91页 |
5.4 小结 | 第91-93页 |
结论 | 第93-95页 |
参考文献 | 第95-107页 |
附录 | 第107-121页 |
缩略词表 | 第121-123页 |
致谢 | 第123-124页 |
作者简介 | 第124页 |