| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1.1 沙枣概况 | 第12-16页 |
| 1.1.1 沙枣的植物、生物学特性 | 第12-13页 |
| 1.1.2 沙枣的有效成分及其功效 | 第13-15页 |
| 1.1.2.1 酚类化合物 | 第14页 |
| 1.1.2.2 鞣质 | 第14页 |
| 1.1.2.3 黄酮类化合物 | 第14-15页 |
| 1.1.2.4 糖类 | 第15页 |
| 1.1.3 沙枣在民间的用途 | 第15-16页 |
| 1.2 多糖的研究进展 | 第16-24页 |
| 1.2.1 多糖的来源 | 第16-19页 |
| 1.2.1.1 微生物多糖 | 第16-17页 |
| 1.2.1.2 动物多糖 | 第17-18页 |
| 1.2.1.3 植物多糖 | 第18-19页 |
| 1.2.2 多糖的提取纯化 | 第19-22页 |
| 1.2.2.1 多糖的提取 | 第19-20页 |
| 1.2.2.2 多糖的纯化 | 第20-22页 |
| 1.2.3 多糖的生理活性 | 第22-23页 |
| 1.2.3.1 抗肿瘤作用 | 第22页 |
| 1.2.3.2 抗病毒作用 | 第22页 |
| 1.2.3.3 抗氧化作用 | 第22-23页 |
| 1.2.3.4 增强免疫活性 | 第23页 |
| 1.2.4 多糖的构效关系 | 第23-24页 |
| 1.2.5 沙枣多糖的研究进展 | 第24页 |
| 1.3 研究的目的、意义及内容 | 第24-26页 |
| 1.3.1 研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第25-26页 |
| 第二章 沙枣多糖的提取工艺研究 | 第26-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 原材料 | 第26页 |
| 2.1.2 实验试剂及仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 沙枣多糖提取流程 | 第27页 |
| 2.2.2 沙枣粗多糖的含量及其提取率的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.3 单因素试验 | 第28-29页 |
| 2.2.3.1 固定条件 | 第28-29页 |
| 2.2.3.2 因素条件 | 第29页 |
| 2.2.4 响应面法优化 | 第29页 |
| 2.2.5 处理方法 | 第29页 |
| 2.3 结果处理分析 | 第29-38页 |
| 2.3.1 单因素实验数据结果分析 | 第29-32页 |
| 2.3.1.1 提取温度的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.1.2 多糖提取时间的影响 | 第30页 |
| 2.3.1.3 提取次数的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.1.4 料液比的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.2 | 第32-38页 |
| 2.3.2.1 沙枣多糖得率回归方程 | 第32-33页 |
| 2.3.2.2 方差分析 | 第33-34页 |
| 2.3.2.3 响应面分析 | 第34-37页 |
| 2.3.2.4 验证试验结果 | 第37-38页 |
| 第三章 沙枣多糖的纯化分离 | 第38-54页 |
| 3.1 具体实验使用材料 | 第38-39页 |
| 3.1.1 具体实验使用试剂 | 第38页 |
| 3.1.2 具体实验使用仪器 | 第38-39页 |
| 3.2 多糖处理实验方法 | 第39-42页 |
| 3.2.1 纯化流程 | 第39页 |
| 3.2.2 沙枣粗多糖中的各类杂质去除 | 第39页 |
| 3.2.2.1 色素的去除 | 第39页 |
| 3.2.2.2 蛋白质的去除 | 第39页 |
| 3.2.2.3 透析 | 第39页 |
| 3.2.3 DEAE-52纤维素色谱柱层析纯化多糖 | 第39-41页 |
| 3.2.3.1 DE-52色谱柱装柱前预处理 | 第39-40页 |
| 3.2.3.2 装柱 | 第40页 |
| 3.2.3.3 上样 | 第40页 |
| 3.2.3.4 洗脱 | 第40页 |
| 3.2.3.5 显色合并 | 第40页 |
| 3.2.3.6 透析除盐 | 第40-41页 |
| 3.2.4 葡聚糖凝胶G-100纯化 | 第41页 |
| 3.2.4.1 装填 | 第41页 |
| 3.2.4.2 洗脱 | 第41页 |
| 3.2.4.3 显色合并 | 第41页 |
| 3.2.5 多糖性质检测 | 第41-42页 |
| 3.2.5.1 测定多糖的分子量 | 第41-42页 |
| 3.2.5.2 比旋光度测定 | 第42页 |
| 3.2.5.3 红外扫描 | 第42页 |
| 3.2.5.4 紫外扫描 | 第42页 |
| 3.2.5.5 单糖分析 | 第42页 |
| 3.3 实验结果及分析 | 第42-53页 |
| 3.3.1 DEAE-52纤维素柱层析 | 第42-43页 |
| 3.3.2 葡聚糖G-100凝胶柱层析 | 第43-45页 |
| 3.3.3 多糖分子量测定 | 第45-46页 |
| 3.3.3.1 高效液相排阻色谱曲线 | 第45页 |
| 3.3.3.2 沙枣各级分多糖分子量 | 第45-46页 |
| 3.3.4 沙枣各级分多糖的比旋光度检测 | 第46页 |
| 3.3.5 红外光谱 | 第46-51页 |
| 3.3.5.1 EAP1红外光谱 | 第47-48页 |
| 3.3.5.2 EAP2红外光谱 | 第48-49页 |
| 3.3.5.3 EAP3红外光谱 | 第49-50页 |
| 3.3.5.4 EAP4红外光谱 | 第50-51页 |
| 3.3.6 紫外吸收 | 第51-53页 |
| 3.3.6.1 沙枣多糖EAP1的紫外光谱 | 第51页 |
| 3.3.6.2 沙枣多糖EAP2的紫外光谱 | 第51-52页 |
| 3.3.6.3 沙枣多糖EAP3的紫外光谱 | 第52页 |
| 3.3.6.4 沙枣多糖EAP4的紫外光谱 | 第52-53页 |
| 3.3.7 单糖组成检测 | 第53页 |
| 3.4 小结 | 第53-54页 |
| 第四章 沙枣多糖抗氧化活性研究 | 第54-60页 |
| 4.1 实验材料 | 第55页 |
| 4.1.1 实验所需试剂 | 第55页 |
| 4.1.2 主要实验仪器 | 第55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-57页 |
| 4.2.1 DPPH·自由基清除实验 | 第55-56页 |
| 4.2.2 沙枣中抗氧化物质对于羟基自由基的清除试验 | 第56-57页 |
| 4.3 结果及分析 | 第57-58页 |
| 4.3.1 DPPH自由基的清除结果 | 第57-58页 |
| 4.3.2 羟基自由基的清除效果 | 第58页 |
| 4.4 小结 | 第58-60页 |
| 第五章 结论 | 第60-61页 |
| 5.1 研究的成果 | 第60页 |
| 5.2 创新处 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69页 |