| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 引言 | 第14-16页 |
| 2 二型糖尿病的研究进展 | 第16-24页 |
| 2.1 T2DM的发病机制研究及治疗现状 | 第16-18页 |
| 2.1.1 T2DM病发病机制研究 | 第16-17页 |
| 2.1.2 T2DM的治疗现状 | 第17-18页 |
| 2.2 NLRP3炎症小体与T2DM | 第18-20页 |
| 2.2.1 NLRP3炎症小体 | 第18-19页 |
| 2.2.2 NLRP3炎症小体的活化 | 第19-20页 |
| 2.2.3 NLRP3炎症小体在T2DM中的作用 | 第20页 |
| 2.3 趋化因子受体CCR7 | 第20-24页 |
| 2.3.1 CCR7与炎症反应 | 第20-21页 |
| 2.3.2 CCR7与胰岛素抵抗 | 第21-22页 |
| 2.3.3 CCR7与其他疾病 | 第22-24页 |
| 3 高脂饮食诱导T2DM小鼠模型建立及评估 | 第24-34页 |
| 3.1 高脂饮食与T2DM | 第24-25页 |
| 3.1.1 高脂饮食诱发T2DM | 第24-25页 |
| 3.1.2 T2DM模型构建方法 | 第25页 |
| 3.2 材料与方法 | 第25-28页 |
| 3.2.1 实验动物分组与处理 | 第25-26页 |
| 3.2.2 实验动物饲料 | 第26页 |
| 3.2.3 实验试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 3.2.4 小鼠生理指标检测 | 第27-28页 |
| 3.2.5 图像分析及统计处理 | 第28页 |
| 3.3 实验结果 | 第28-33页 |
| 3.3.1 实验期间各组小鼠体脂含量变化 | 第28-29页 |
| 3.3.2 实验期间各组小鼠体重变化 | 第29-30页 |
| 3.3.3 实验期间各组小鼠血糖变化 | 第30-31页 |
| 3.3.4 实验期间各组小鼠摄食量变化 | 第31页 |
| 3.3.5 实验小鼠葡萄糖耐受实验（OGTT） | 第31-32页 |
| 3.3.6 实验小鼠胰岛素耐受实验（ITT） | 第32-33页 |
| 3.4 讨论 | 第33-34页 |
| 4 CCR7介导T2DM小鼠下丘脑胰岛素抵抗 | 第34-56页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-42页 |
| 4.1.1 实验动物分组与处理 | 第35页 |
| 4.1.2 实验试剂与仪器 | 第35-38页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第38-42页 |
| 4.1.4 图像分析及数据处理 | 第42页 |
| 4.2 实验结果 | 第42-54页 |
| 4.2.1 T2DM模型小鼠下丘脑CCR7蛋白表达量检测 | 第42-45页 |
| 4.2.2 CCR7基因敲除小鼠模型的构建 | 第45-49页 |
| 4.2.3 CCR7基因敲除小鼠生理指标检测 | 第49-54页 |
| 4.3 讨论 | 第54-56页 |
| 5 CCR7诱导T2DM小鼠下丘脑NLRP3炎症小体活化 | 第56-66页 |
| 5.1 材料与方法 | 第57-58页 |
| 5.1.1 实验动物分组和处理 | 第57页 |
| 5.1.2 药品与仪器 | 第57-58页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第58页 |
| 5.1.4 图像分析及数据处理 | 第58页 |
| 5.2 实验结果 | 第58-63页 |
| 5.2.1 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑NLRP3蛋白表达的影响 | 第58-59页 |
| 5.2.2 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑ASC蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
| 5.2.3 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑Caspase-1 蛋白表达的影响 | 第60-61页 |
| 5.2.4 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑IL-1β蛋白活化的影响 | 第61-62页 |
| 5.2.5 高脂诱导T2DM小鼠下丘脑NLRP3和CCR7的免疫标记 | 第62-63页 |
| 5.3 讨论 | 第63-66页 |
| 6 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑TNF-α蛋白活化的影响 | 第66-72页 |
| 6.1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 6.1.1 实验动物分组和处理 | 第67页 |
| 6.1.2 药品与仪器 | 第67页 |
| 6.1.3 实验方法 | 第67页 |
| 6.1.4 图像分析及数据处理 | 第67-68页 |
| 6.2 实验结果 | 第68-70页 |
| 6.2.1 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑TNF-α蛋白活化的影响 | 第68-70页 |
| 6.3 讨论 | 第70-72页 |
| 7 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑神经细胞损伤的影响 | 第72-82页 |
| 7.1 材料与方法 | 第73-74页 |
| 7.1.1 实验动物分组和处理 | 第73页 |
| 7.1.2 药品与仪器 | 第73-74页 |
| 7.1.3 实验方法 | 第74页 |
| 7.1.4 图像分析及数据处理 | 第74页 |
| 7.2 实验结果 | 第74-80页 |
| 7.2.1 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑小胶质细胞活化的影响 | 第74-78页 |
| 7.2.2 CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑星形胶质细胞活化的影响 | 第78-80页 |
| 7.3 讨论 | 第80-82页 |
| 8 CCR7对T2DM小鼠下丘脑胰岛素信号通路IRS/Akt蛋白的影响 | 第82-90页 |
| 8.1 材料与方法 | 第83-85页 |
| 8.1.1 实验动物分组和处理 | 第83页 |
| 8.1.2 药品与仪器 | 第83页 |
| 8.1.3 实验方法 | 第83-84页 |
| 8.1.4 图像分析及数据处理 | 第84-85页 |
| 8.2 实验结果 | 第85-88页 |
| 8.2.1 CCR7对高脂诱导T2DM小鼠下丘脑IRS/Akt蛋白的影响 | 第85-86页 |
| 8.2.2 CCR7对高脂诱导T2DM小鼠下丘脑p-Akt蛋白的影响 | 第86-88页 |
| 8.3 讨论 | 第88-90页 |
| 结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-104页 |
| 附录 1、CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑Leptin蛋白表达的影响 | 第104-110页 |
| 1.1 材料与方法 | 第105-106页 |
| 1.1.1 实验动物分组和处理 | 第105页 |
| 1.1.2 药品与仪器 | 第105页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第105-106页 |
| 1.1.4 图像分析及数据处理 | 第106页 |
| 1.2 实验结果 | 第106-110页 |
| 1.2.1 CCR7对高脂诱导T2DM小鼠下丘脑Leptin蛋白的影响 | 第106-107页 |
| 1.2.2 高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑CCR7和POMC神经元的免疫标记 | 第107-108页 |
| 1.2.3 高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑CCR7和AgRP神经元的免疫标记 | 第108-110页 |
| 附录 2、CCR7对高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑Nestin和CNPase蛋白活化的影响 | 第110-114页 |
| 2.1 材料与方法 | 第111-112页 |
| 2.1.1 实验动物分组和处理 | 第111页 |
| 2.1.2 药品与仪器 | 第111页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第111页 |
| 2.1.4 图像分析及数据处理 | 第111-112页 |
| 2.2 实验结果 | 第112-114页 |
| 2.2.1 高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑CCR7和Nestin蛋白的免疫标记 | 第112-113页 |
| 2.2.2 高脂饮食诱导的T2DM小鼠下丘脑CCR7和CNPase蛋白的免疫标记 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-116页 |
| 作者简介 | 第116-118页 |
| 学位论文数据集 | 第118页 |
