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受体酪氨酸磷酸酶PTPRU以及丝苏氨酸激酶CDKL5在胶质瘤中的功能研究

第一部分 受体酪氨酸磷酸酶PTPRU在胶质瘤中的功能研究第5-8页
    摘要第5-6页
    Abstract第6-8页
第二部分 丝苏氨酸激酶CDKL5在胶质瘤中的功能研究第8-21页
    摘要第8-9页
    Abstract第9-21页
第一部分 受体酪氨酸磷酸酶PTPRU在胶质瘤中的功能研究第21-62页
    第1章 前言第21-30页
        1.1 恶性胶质瘤的介绍第21-23页
            1.1.1 胶质瘤的病因与治疗第21-22页
            1.1.2 胶质瘤的增殖与侵袭第22-23页
        1.2 受体酪氨酸磷酸酶的研究现状第23-28页
            1.2.1 酪氨酸磷酸酶和PTPRU第23-24页
            1.2.2 R2B型受体酪氨酸磷酸酶与癌症第24-25页
            1.2.3 胶质瘤中PTPRU的表达第25-28页
        1.3 β-catenin信号通路的介绍第28-29页
        1.4 局部粘附蛋白的介绍第29-30页
    第2章 实验材料与方法第30-41页
        2.1 细胞培养第30页
        2.2 胶质瘤病人样本的采集第30页
        2.3 质粒构建和慢病毒包装第30-33页
            2.3.1 构建PTPRU的干扰质粒第30-31页
            2.3.2 构建LEF1-CTNNB1融合质粒第31-32页
            2.3.3 筛选有效shRNA第32页
            2.3.4 慢病毒感染细胞第32-33页
        2.4 蛋白免疫印迹第33-35页
            2.4.1 提取细胞蛋白第33页
            2.4.2 提取组织蛋白第33页
            2.4.3 配置SDS-PAGE凝胶第33-34页
            2.4.4 电泳与转膜第34页
            2.4.5 孵育抗体第34页
            2.4.6 显影第34-35页
            2.4.7 免疫印迹实验所用抗体第35页
        2.5 定量PCR第35-36页
        2.6 免疫细胞荧光第36页
        2.7 MTT分析第36页
        2.8 克隆形成分析第36页
        2.9 流式细胞术检测细胞周期和凋亡第36-37页
        2.10 Transwell侵袭实验和Transwell迁移实验第37页
        2.11 划痕-愈合实验第37-38页
        2.12 细胞粘附实验第38页
        2.13 血管生成拟态实验第38页
        2.14 裸鼠颅内成瘤实验第38-39页
        2.15 H&E染色第39页
        2.16 免疫组织荧光第39页
        2.17 免疫沉淀第39页
        2.18 荧光素酶报告实验第39-40页
        2.19 数据统计第40-41页
    第3章 实验结果第41-58页
        3.1 PTPRU在胶质母细胞瘤中的表达情况第41-43页
            3.1.1 PTPRU在人乳腺癌、肺癌、胶质母细胞瘤细胞系中的表达情况第41页
            3.1.2 PTPRU在大鼠胶质母细胞瘤细胞系和原代大鼠胶质细胞中的表达情况第41-42页
            3.1.3 PTPRU在胶质母细胞瘤细胞系的细胞浆/膜和细胞核中的分布第42页
            3.1.4 全长型PTPRU和PTPRU-130kDa亚型的表达水平与胶质瘤恶性程度的关系第42-43页
        3.2 针对PTPRU mRNA的shRNA的敲减有效性验证第43-45页
        3.3 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞的增殖和存活能力第45-46页
        3.4 敲减PTPRU影响胶质母细胞瘤细胞的细胞周期分布、凋亡及相关蛋白的表达第46-48页
            3.4.1 敲减PTPRU改变胶质母细胞瘤细胞的细胞周期分布,并促进凋亡第46-47页
            3.4.2 敲减PTPRU影响增殖、凋亡相关蛋白的表达水平第47-48页
        3.5 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞的运动能力和血管生成拟态能力第48-52页
            3.5.1 敲减PTPRU改变胶质母细胞瘤细胞的形态第48-49页
            3.5.2 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞的侵袭、迁移和粘附能力第49-50页
            3.5.3 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞的血管生成拟态能力第50-51页
            3.5.4 敲减PTPRU抑制细胞运动和血管生成拟态相关蛋白的水平第51-52页
        3.6 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞在裸鼠颅内的生长第52-53页
        3.7 敲减PTPRU抑制胶质母细胞瘤细胞中的β-catenin转录激活信号通路第53-55页
            3.7.1 敲减PTPRU引起β-catenin的去酪氨酸磷酸化和转录激活活性下调第53-54页
            3.7.2 β-catenin介导PTPRU对胶质母细胞瘤迁移能力的调控第54-55页
            3.7.3 胶质母细胞瘤细胞中β-catenin的转录激活活性显著低于结肠癌细胞第55页
        3.8 敲减PTPRU促进FAK蛋白通过泛素化-蛋白酶体途径降解第55-58页
            3.8.1 敲减PTPRU促进局部粘附蛋白的降解第55-56页
            3.8.2 敲减PTPRU促进FAK蛋白通过泛素-蛋白酶体途径降解第56-57页
            3.8.3 胶质瘤组织中PTPRU-130kDa蛋白亚型与局部粘附蛋白的表达正相关第57-58页
    第4章 讨论第58-62页
        4.1 PTPRU在恶性胶质瘤中的表达第58-59页
        4.2 PTPRU稳定局部粘附蛋白第59页
        4.3 PTPRU维持β-catenin的转录激活活性第59-62页
第二部分 丝苏氨酸激酶CDKL5在胶质瘤中的功能研究第62-94页
    第1章 前言第62-76页
        1.1 CDKL5蛋白第62-68页
            1.1.1 CDKL5蛋白的结构与功能第62-63页
            1.1.2 CDKL5蛋白的调控机制与相应功能第63-64页
            1.1.3 CDKL5与癌症第64-68页
        1.2 胶质瘤干细胞与分化第68-71页
            1.2.1 胶质瘤干细胞第68-69页
            1.2.2 表观遗传调控与胶质瘤分化第69-71页
            1.2.3 其他胶质瘤分化机制第71页
        1.3 TRAIL耐受性的分子机制第71-76页
            1.3.1 TRAIL与TRAIL受体第71-72页
            1.3.2 TRAIL受体信号通路第72-73页
            1.3.3 TRAIL耐受性机制第73-74页
            1.3.4 上调DR5表达降低胶质瘤TRAIL耐受性第74-76页
    第2章 实验材料与方法第76-78页
        2.1 细胞培养第76页
        2.2 质粒构建第76-77页
        2.3 免疫印迹实验所用抗体第77页
        2.4 裸鼠皮下成瘤实验第77页
        2.5 肿瘤球形成分析第77页
        2.6 流式细胞术检测细胞膜DR5的表达第77-78页
    第3章 实验结果第78-91页
        3.1 CDKL5在胶质瘤中的表达情况第78-79页
            3.1.1 CDKL5在癌症细胞系中的表达情况第78-79页
            3.1.2 CDKL5在胶质瘤组织中的表达情况第79页
        3.2 敲减CDKL5抑制胶质母细胞瘤细胞的生长第79-82页
            3.2.1 敲减CDKL5抑制胶质母细胞瘤细胞的体外生长第79-81页
            3.2.2 敲减CDKL5抑制胶质母细胞瘤细胞的体内生长第81-82页
        3.3 敲减CDKL5抑制胶质母细胞瘤细胞的迁移和侵袭第82页
        3.4 敲减CDKL5促进胶质母细胞瘤细胞的分化第82-84页
            3.4.1 敲减CDKL5引起胶质母细胞瘤细胞形态的改变第82-83页
            3.4.2 敲减CDKL5引起胶质瘤分化相关标记物表达的改变第83页
            3.4.3 敲减CDKL5引起表观遗传标记物表达的改变第83-84页
        3.5 敲减CDKL5抑制U87细胞的干细胞属性第84-85页
        3.6 抑制MAPK信号通路对胶质母细胞瘤细胞向星形胶质细胞分化的影响第85-86页
        3.7 CDKL5107不影响胶质母细胞瘤细胞增殖第86页
        3.8 敲减CDKL5促进TRAIL诱导胶质母细胞瘤细胞产生凋亡第86-89页
            3.8.1 敲减CDKL5降低胶质母细胞瘤细胞对TRAIL的耐受性第86-87页
            3.8.2 敲减CDKL5促进TRAIL诱导胶质母细胞瘤细胞产生胱天蛋白酶依赖型凋亡第87-88页
            3.8.3 敲减CDKL5对TRAIL处理下凋亡相关蛋白表达的影响第88-89页
        3.9 敲减CDKL5促进胶质母细胞瘤细胞中DR5的表达第89-91页
    第4章 讨论第91-94页
        4.1 CDKL5在胶质母细胞瘤中的表达第91-92页
        4.2 CDKL5调控表观遗传修饰第92-93页
        4.3 CDKL5调控TRAIL耐受性第93-94页
参考文献第94-118页
致谢第118-119页
附录Ⅰ 在校期间发表文章第119页

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