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白藜芦醇与镉诱导HEK 293T细胞自噬与凋亡关系的初步研究

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
第一部分 文献综述第12-35页
    第一章 镉的性质及毒性作用第13-20页
        1.1 镉的理化性质第13页
        1.2 镉的毒性第13-15页
            1.2.1 镉对人体的危害第13-14页
            1.2.2 镉中毒的机理第14页
            1.2.3 镉中毒的干预措施第14-15页
        1.3 镉与氧化应激第15-17页
            1.3.1 氧化应激第15页
            1.3.2 镉致氧化应激第15-17页
        参考文献第17-20页
    第二章 自噬(Autophagy)机理的概述第20-28页
        2.1 自噬的定义及其发生过程第20-22页
            2.1.1 自噬的定义第20-21页
            2.1.2 自噬的分类第21页
            2.1.3 自噬的观察检测第21-22页
        2.2 细胞自噬的分子机制第22-23页
        2.3 细胞自噬与细胞凋亡的关系第23页
        2.4 镉致细胞自噬与凋亡的研究进展第23-25页
        参考文献第25-28页
    第三章 白藜芦醇的性质及生物学功能第28-35页
        3.1 白藜芦醇的来源及理化性质第28页
        3.2 白藜芦醇的化学制备第28-29页
        3.3 白藜芦醇的生物学功能第29-30页
            3.3.1 白藜芦醇的抗氧化作用第29页
            3.3.2 白藜芦醇的抗癌作用第29-30页
            3.3.3 白藜芦醇对心血管疾病的保护作用第30页
        3.4 白藜芦醇与自噬的关系第30-31页
        3.5 白藜芦醇与SIRT1的关系第31-32页
        参考文献第32-35页
第二部分 实验研究第35-68页
    第四章 白藜芦醇与镉诱导的自噬关系的初步探究第36-45页
        4.1 材料第37页
            4.1.1 主要试剂第37页
            4.1.2 实验仪器第37页
            4.1.3 细胞系第37页
        4.2 方法第37-39页
            4.2.1 细胞的培养第37-38页
            4.2.2 透射电子显微镜观察细胞自噬体、溶酶体形态第38页
            4.2.3 免疫印记(Western blot)分析第38-39页
            4.2.4 激光共聚焦分析第39页
            4.2.5 数据处理第39页
        4.3 结果与分析第39-42页
            4.3.1 透射电子显微镜观察镉诱导HEK 293T细胞内自噬体的形成第39-40页
            4.3.2 白藜芦醇能增强镉诱导的细胞自噬第40-41页
            4.3.3 3-MA抑制镉诱导的细胞自噬及白藜芦醇的协同作用第41-42页
        4.4 讨论第42-44页
        参考文献第44-45页
    第五章 白藜芦醇与镉诱导细胞自噬中自噬体-溶酶体融合的关系第45-53页
        5.1 材料第46页
            5.1.1 主要试剂第46页
            5.1.2 实验仪器第46页
            5.1.3 细胞系第46页
        5.2 方法第46-48页
            5.2.1 细胞的培养第46-47页
            5.2.2 免疫印记(Western blot)分析第47页
            5.2.3 激光共聚焦分析第47-48页
            5.2.4 数据处理第48页
        5.3 结果与分析第48-50页
            5.3.1 白藜芦醇对溶酶体活性的影响第48-49页
            5.3.2 白藜芦醇与自噬体溶酶体融合之间的关系第49-50页
            5.3.3 激光共聚焦观察RSV/Cd对自噬体溶酶体融的影响第50页
        5.4 讨论第50-52页
        参考文献第52-53页
    第六章 白藜芦醇的抗氧化性与镉介导的细胞自噬之间的关系第53-61页
        6.1 材料第54页
            6.1.1 主要试剂第54页
            6.1.2 实验仪器第54页
            6.1.3 细胞系第54页
        6.2 方法第54-56页
            6.2.1 细胞的培养第54-55页
            6.2.2 活性氧检测第55页
            6.2.3 免疫印记(Western blot)分析第55页
            6.2.4 激光共聚焦分析第55-56页
            6.2.5 数据处理第56页
        6.3 结果与分析第56-58页
            6.3.1 白藜芦醇能降低镉诱导的活性氧增加第56-57页
            6.3.2 白藜芦醇通过激活SIRT1调节镉诱导的自噬第57-58页
            6.3.3 抑制SIRT1可以减少自噬体溶酶体融合第58页
        6.4 讨论第58-60页
        参考文献第60-61页
    第七章 白藜芦醇与镉诱导的细胞凋亡之间的关系第61-68页
        7.1 材料第61-62页
            7.1.1 主要试剂第61-62页
            7.1.2 实验仪器第62页
            7.1.3 细胞系第62页
        7.2 方法第62-64页
            7.2.1 细胞的培养第62页
            7.2.2 细胞活性形态学分析第62-63页
            7.2.3 免疫印记(Western blot)分析第63页
            7.2.4 流式细胞仪检测细胞凋亡第63页
            7.2.5 数据处理第63-64页
        7.3 结果与分析第64-66页
            7.3.1 相差倒置显微镜观察白藜芦醇对镉诱导的细胞凋亡的影响第64-65页
            7.3.2 Western blot检测白藜芦醇对镉诱导的细胞凋亡的影响第65-66页
            7.3.3 流式细胞术检测白藜芦醇对镉诱导的细胞凋亡的影响第66页
        7.4 讨论第66-67页
        参考文献第67-68页
全文总结第68-69页
英文缩略词表第69-70页
攻读硕士期间发表论文第70-71页
致谢第71页

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