| 摘要 | 第1-4页 |
| Summary | 第4-6页 |
| 缩略词表 | 第6-9页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| Ⅰ 文献综述 | 第10-21页 |
| ·当归的生长周期和“早期抽薹“现象 | 第10-11页 |
| ·植物发生早抽薹现象的内因 | 第11-13页 |
| ·遗传因素 | 第11-12页 |
| ·植物的内源激素对早抽薹的影响 | 第12页 |
| ·各种代谢物质对抽薹的影响 | 第12-13页 |
| ·有关酶活性对抽薹的影响 | 第13页 |
| ·植物发生早抽薹现象的外因 | 第13-16页 |
| ·温度 | 第13-14页 |
| ·光照 | 第14-15页 |
| ·营养条件 | 第15页 |
| ·气候及水分等因素 | 第15-16页 |
| ·目前防治当归抽薹的主要措施 | 第16-18页 |
| ·育苗过程中种子的选择 | 第16页 |
| ·当归种植过程中播种期及种苗的选择 | 第16-17页 |
| ·当归栽培条件及种植密度对防治早抽薹的作用 | 第17页 |
| ·激素处理对防治当归抽薹的作用 | 第17-18页 |
| ·DDRT-PCR 在筛选植物基因差异表达中的应用 | 第18-21页 |
| ·研究植物基因差异表达的方法 | 第18-19页 |
| ·DDRT-PCR 技术的原理及应用 | 第19-21页 |
| Ⅱ 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| Ⅲ 技术路线图 | 第22-23页 |
| Ⅳ 材料与方法 | 第23-34页 |
| ·材料 | 第23页 |
| ·实验主要药品配置 | 第23-24页 |
| ·实验仪器设备 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-31页 |
| ·可溶性糖含量测定 | 第24页 |
| ·游离氨基酸含量的测定 | 第24-25页 |
| ·过氧化物酶（POD）活性测定 | 第25-26页 |
| ·多酚氧化酶（PPO)活性测定 | 第26页 |
| ·当归叶片中可溶性蛋白含量的测定 | 第26页 |
| ·当归中总RNA 的提取 | 第26-27页 |
| ·改良CTAB 法提取 | 第27页 |
| ·异硫酸氰胍法 | 第27-28页 |
| ·TIANGEN 的RNAsimple Total RNA Kit 总RNA 提取试剂盒 | 第28-29页 |
| ·RNA 的纯化 | 第29页 |
| ·RNA 的反转录 | 第29-30页 |
| ·DDRT-PCR 反应各参数的优化 | 第30页 |
| ·DDRT-PCR 所用的引物 | 第30-31页 |
| ·变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第31-34页 |
| ·玻璃板的准备 | 第31页 |
| ·变性聚丙烯酞胺凝胶配置 | 第31-32页 |
| ·PCR 产物聚丙烯凝胶电泳分离 | 第32页 |
| ·凝胶染色 | 第32-33页 |
| ·DNA 差异条带回收 | 第33页 |
| ·差异条带的二次扩增 | 第33-34页 |
| Ⅴ 结果分析 | 第34-44页 |
| ·当归抽薹植株生理生化特征分析 | 第34-36页 |
| ·当归抽薹过程中可溶性糖含量变化 | 第34页 |
| ·当归抽薹过程中游离氨基酸含量的变化 | 第34-35页 |
| ·当归抽薹过程中可溶性蛋白含量的变化 | 第35页 |
| ·当归抽薹过程中POD 活性变化 | 第35页 |
| ·当归抽薹过程中PPO 活性变化 | 第35-36页 |
| ·当归DDRT-PCR 分析体系的建立 | 第36-39页 |
| ·不同方法提取当归叶片中总RNA 的提取效果 | 第36-38页 |
| ·PCR 扩增体系的优化 | 第38页 |
| ·引物筛选及cDNA 扩增结果 | 第38-39页 |
| ·当归早期抽薹与未抽薹性状的差异cDNA 片段筛选 | 第39-41页 |
| ·cDNA-PCR 扩增产物的变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第39-40页 |
| ·cDNA 差异条带回收 | 第40-41页 |
| ·当归早期抽薹与不抽薹性状的差异cDNA 片段的序列及分析 | 第41-44页 |
| Ⅵ 讨论 | 第44-48页 |
| ·当归抽薹植株的生理生化特征 | 第44-45页 |
| ·当归叶片中总RNA 的提取 | 第45-46页 |
| ·cDNA 的扩增及引物的筛选 | 第46页 |
| ·变性聚丙烯酞胺凝胶电泳及差异条带的回收 | 第46-47页 |
| ·DDRT-PCR 技术在筛选当归早抽薹相关基因的可行性 | 第47-48页 |
| Ⅶ 结论 | 第48-49页 |
| Ⅷ 参考文献 | 第49-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 导师简介 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57-58页 |
