| 摘要 | 第3-9页 |
| ABSTRACT | 第9-15页 |
| 第一章 前言 | 第19-34页 |
| 1 α-葡萄糖苷酶 | 第19-27页 |
| 1.1 α-葡萄糖苷酶的研究进展 | 第20页 |
| 1.2 α-葡萄糖苷酶的催化机制 | 第20-22页 |
| 1.3 α-葡萄糖苷酶抑制剂 | 第22-27页 |
| 2 镉的性质 | 第27-30页 |
| 2.1 镉的发现与分布 | 第27页 |
| 2.2 镉的应用 | 第27-28页 |
| 2.3 镉的危害 | 第28-30页 |
| 3 管道直饮水 | 第30-32页 |
| 4 微生态学 | 第32-33页 |
| 5 饮水卫生与健康 | 第33-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-49页 |
| 2.1 实验试剂和仪器 | 第34-36页 |
| 2.1.1 实验主要试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.2 实验主要仪器 | 第35-36页 |
| 2.2 样品采集及处理 | 第36-40页 |
| 2.2.1 样品采集 | 第36页 |
| 2.2.2 有关试剂的配制 | 第36-40页 |
| 2.3 实验步骤 | 第40-49页 |
| 2.3.1 a-葡萄糖苷酶活性的测定 | 第40页 |
| 2.3.2 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶活性的影响 | 第40页 |
| 2.3.3 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶抑制作用类型的判断 | 第40页 |
| 2.3.4 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学分析 | 第40-41页 |
| 2.3.5 抑制动力学的时间过程 | 第41页 |
| 2.3.6 荧光光度法：内源与ANS结合荧光的测量 | 第41页 |
| 2.3.7 水样品理化数据检测 | 第41-44页 |
| 2.3.8 细菌总DNA提取 | 第44-45页 |
| 2.3.9 PCR扩增 | 第45-46页 |
| 2.3.10 Illumina Hiseq2000测序 | 第46-47页 |
| 2.3.11 生物信息学分析与统计学处理 | 第47-49页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第49-72页 |
| 3.1 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶的结构和功能影响的研究 | 第49-58页 |
| 3.1.1 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶活性的影响 | 第49-51页 |
| 3.1.2 Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶抑制的动力学时间过程测量 | 第51-52页 |
| 3.1.3 双倒数Lineweaver-Burk实验探讨Cd~(2+)对α-葡萄糖苷酶的抑制机制 | 第52-53页 |
| 3.1.4 与Cd~(2+)结合后引发的α-葡萄糖苷酶三级结构的改变 | 第53-56页 |
| 3.1.5 分子动力学模拟Cd~(2+)与α-葡萄糖苷酶的结合 | 第56-58页 |
| 3.2 样品基本数据采集 | 第58-59页 |
| 3.3 样品理化性质检测 | 第59-60页 |
| 3.4 测序结果与质量控制 | 第60-61页 |
| 3.5 样品菌群结构分析 | 第61-64页 |
| 3.6 处理前后样品中菌群α-多样性的差异分析 | 第64页 |
| 3.7 处理前后样品中菌群β-多样性的差异分析 | 第64-65页 |
| 3.8 不同处理工艺所得样品中菌群α-多样性的差异分析 | 第65-66页 |
| 3.9 不同处理工艺所得样品中菌群β-多样性的差异分析 | 第66-67页 |
| 3.10 饮水中Cd~(2+)浓度对微生物菌群分布的影响 | 第67-69页 |
| 3.11 讨论 | 第69-72页 |
| 第四章 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 附录 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间获得成果 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
