| 中文摘要 | 第4-9页 |
| ABSTRACT | 第9-15页 |
| 中英文缩略词 | 第16-21页 |
| 前言 | 第21-29页 |
| 1. 立题依据和研究问题的提出 | 第21-24页 |
| 2. 研究目的和意义 | 第24-25页 |
| 3. 研究思路和技术路线图 | 第25-29页 |
| 文献综述 | 第29-49页 |
| 1. 高脂膳食易诱发肥胖 | 第29-31页 |
| 2. 肥胖易诱发内质网应激 | 第31-37页 |
| 3. 有氧运动对肥胖诱导的内质网应激的调节作用 | 第37-39页 |
| 4. 展望 | 第39页 |
| 参考文献 | 第39-49页 |
| 第一部分 肥胖诱导大鼠海马内质网应激影响神经可塑性蛋白表达的相关信号机制及其有氧运动的调控作用 | 第49-88页 |
| 1. 研究对象 | 第49-50页 |
| 1.1 实验动物 | 第49-50页 |
| 1.2 大鼠饲料配方 | 第50页 |
| 2．研究方法 | 第50-61页 |
| 2.1 动物分组及肥胖模型的建立 | 第50-51页 |
| 2.2 大鼠有氧运动跑台训练方案 | 第51页 |
| 2.3 动物取材和指标检测 | 第51-61页 |
| 2.3.1 双能X线检测大鼠脂肪重量和脂肪/体重比率 | 第51-52页 |
| 2.3.2 动物取材 | 第52页 |
| 2.3.3 血液生化指标检测 | 第52-54页 |
| 2.3.4 海马组织膜蛋白、核蛋白和胞质蛋白的抽提 | 第54-55页 |
| 2.3.5 海马组织各抽提蛋白的浓度测定----BCA法 | 第55-56页 |
| 2.3.6 海马组织指标检测和Western Blot实验操作步骤 | 第56-61页 |
| 3. 统计学分析 | 第61页 |
| 4. 实验结果 | 第61-75页 |
| 4.1 肥胖建模期间大鼠体重的变化和有氧运动干预对大鼠摄食量、能量摄入和体重的影响 | 第61-63页 |
| 4.2 高脂膳食和有氧运动干预对大鼠脂肪重量和脂肪比率的影响 | 第63-64页 |
| 4.3 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠血液指标的影响 | 第64-66页 |
| 4.4 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马GLUT3和FATP1表达的影响 | 第66-67页 |
| 4.5 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内质网应激的影响 | 第67-68页 |
| 4.6 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内神经可塑性相关蛋白表达的影响 | 第68-69页 |
| 4.7 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内p38/ERK-CREB信号通路的影响 | 第69-71页 |
| 4.8 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内NLRP3炎症小体和IL-1β表达的影响 | 第71-72页 |
| 4.9 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内质网应激诱导凋亡蛋白表达的影响 | 第72-73页 |
| 4.10 高脂膳食诱导肥胖和有氧运动干预对大鼠海马内Nrf2/ARE-HO-1 信号通路表达的影响 | 第73-75页 |
| 5. 分析与讨论 | 第75-82页 |
| 5.1 高脂膳食诱导肥胖引起大鼠糖脂代谢异常并影响大脑的糖脂代谢 | 第75-76页 |
| 5.2 高脂膳食诱导肥胖引起大鼠海马内质网应激 | 第76-78页 |
| 5.3 海马内质网应激影响神经可塑性蛋白表达的可能机制 | 第78-79页 |
| 5.4 有氧运动对肥胖大鼠体重和糖脂代谢的调控作用 | 第79-81页 |
| 5.5 有氧运动对肥胖大鼠海马内质网应激的调控作用及其可能机制 | 第81-82页 |
| 5.6 有氧运动对肥胖大鼠海马内神经可塑性蛋白表达的调控作用 | 第82页 |
| 6. 小结 | 第82-83页 |
| 7. 参考文献 | 第83-88页 |
| 第二部分 离体研究高糖脂诱导的海马内质网应激对神经可塑性蛋白表达的直接调控作用 | 第88-130页 |
| 1. 实验材料和方法 | 第88-97页 |
| 1.1 实验对象和分组 | 第88-89页 |
| 1.2 实验方法 | 第89-97页 |
| 1.2.1 海马细胞原代培养方法 | 第89-90页 |
| 1.2.2 高糖脂培养基、抑制剂培养基、激动剂培养基细胞干预浓度的选择 | 第90-92页 |
| 1.2.3 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第92-93页 |
| 1.2.4 细胞总RNA抽提和浓度测定 | 第93-94页 |
| 1.2.5 实时荧光定量PCR (RT-PCR) | 第94-96页 |
| 1.2.6 细胞膜蛋白、核蛋白和胞质蛋白的抽提 | 第96-97页 |
| 1.2.7 蛋白指标检测和Western Blot实验步骤 | 第97页 |
| 1.3 统计学分析 | 第97页 |
| 2 实验结果 | 第97-115页 |
| 2.1 不同浓度棕榈酸对海马细胞生长的影响 | 第97-98页 |
| 2.2 不同浓度葡萄糖对海马细胞生长的影响 | 第98-99页 |
| 2.3 不同浓度高糖脂培养基对海马细胞生长的影响 | 第99-100页 |
| 2.4 流式检测不同浓度高糖脂培养基对海马细胞凋亡的影响 | 第100-101页 |
| 2.5 流式检测不同浓度 4-PBA抑制剂培养基对海马细胞凋亡的影响 | 第101-103页 |
| 2.6 流式检测不同浓度TBHQ激动剂培养基对海马细胞凋亡的影响 | 第103-105页 |
| 2.7 不同干预培养基对海马细胞GLUT3和FATP1表达的影响 | 第105-106页 |
| 2.8 不同干预培养基对海马细胞ERS发生的影响 | 第106-107页 |
| 2.9 不同干预培养基对海马细胞ERS介导凋亡的影响 | 第107-108页 |
| 2.10 不同干预培养基对海马细胞神经可塑性蛋白表达的影响 | 第108页 |
| 2.11 不同干预培养基对海马细胞p38/ERK-CREB信号通路的影响 | 第108-110页 |
| 2.12 不同干预培养基对海马细胞BDNF和SYN mRNA表达的影响 | 第110-111页 |
| 2.13 不同干预培养基对海马细胞NLRP3-IL-1β 炎症信号通路的影响 | 第111-112页 |
| 2.14 不同干预培养基对海马细胞NLRP3 mRNA表达的影响 | 第112-113页 |
| 2.15 不同干预培养基对海马细胞Nrf2-HO-1 信号通路的影响 | 第113-114页 |
| 2.16 不同干预培养基对海马细胞HO-1 mRNA表达的影响 | 第114-115页 |
| 3．分析与讨论 | 第115-124页 |
| 3.1 高糖脂对海马细胞生长的影响及高糖脂培养基的配制 | 第115-117页 |
| 3.2 ERS抑制剂 4-PBA和Nrf2激动剂TBHQ干预浓度的选择 | 第117-118页 |
| 3.3 海马细胞糖脂转运的机制 | 第118-120页 |
| 3.4 高糖脂诱发海马细胞ERS及ERS调控BDNF和SYN表达的相关机制 | 第120-123页 |
| 3.5 Nrf2-HO-1 信号通路对海马ERS的调控作用 | 第123-124页 |
| 4. 小结 | 第124页 |
| 5. 参考文献 | 第124-130页 |
| 全文总结 | 第130-131页 |
| 研究主要创新之处 | 第131-132页 |
| 攻读博士学位期间学术科研成果 | 第132-133页 |
| 资助声明 | 第133-134页 |
| 致谢 | 第134-135页 |
