| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第16-37页 |
| 1 植物热压力反应的分子调控机制 | 第16-19页 |
| 2 程序性细胞死亡过程的分子信号途径 | 第19-26页 |
| 2.1 自溶的程序性细胞死亡 | 第21-23页 |
| 2.2 非自溶的程序性细胞死亡 | 第23-26页 |
| 3 植物核糖体 | 第26-29页 |
| 4 染色质修饰 | 第29-35页 |
| 4.1 组蛋白修饰与DNA甲基化 | 第30-32页 |
| 4.2 染色质结构与压力反应 | 第32-35页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第35-37页 |
| 材料和方法 | 第37-55页 |
| 1 实验材料 | 第37-43页 |
| 1.1 植物和细胞材料 | 第37页 |
| 1.2 质粒探针 | 第37页 |
| 1.3 重要实验试剂 | 第37-41页 |
| 1.4 引物序列 | 第41-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-55页 |
| 2.1 蛋白免疫印迹 | 第43-45页 |
| 2.2 免疫染色 | 第45-46页 |
| 2.3 定量实时PCR | 第46-48页 |
| 2.4 染色质免疫共沉淀 | 第48-49页 |
| 2.5 荧光原位杂交 | 第49-51页 |
| 2.6 活性氧分子和相关酶酶活测定 | 第51-54页 |
| 2.6.1 超氧化物歧化酶酶活测定 | 第51-52页 |
| 2.6.2 过氧化物酶酶活测定 | 第52页 |
| 2.6.3 过氧化氢酶酶活测定 | 第52-53页 |
| 2.6.4 超氧负离子含量测定 | 第53页 |
| 2.6.5 过氧化氢含量测定 | 第53-54页 |
| 2.7 凋亡细胞的流式细胞术检测 | 第54页 |
| 2.8 DNA Ladder实验 | 第54页 |
| 2.9 DNA甲基化检测 | 第54-55页 |
| 结果与分析 | 第55-88页 |
| 1 热压力诱导的玉米幼苗叶片程序性细胞死亡过程中的染色质调控 | 第55-75页 |
| 1.1 热压力诱导玉米叶片发生程序性细胞死亡 | 第55-58页 |
| 1.2 热压力诱导的程序性细胞死亡是由长时间的活性氧(ROS)积累导致 | 第58-60页 |
| 1.3 热压力诱导的程序性细胞死亡过程伴随着基因组水平的组蛋白修饰变化和染色质脱浓缩 | 第60-63页 |
| 1.4 低浓度表观修饰抑制剂会导致特定组蛋白乙酰化变化和细胞周期阻滞 | 第63-66页 |
| 1.5 组蛋白乙酰化变化不会直接造成基因组DNA损伤 | 第66-67页 |
| 1.6 细胞内活性氧分子调控低浓度表观修饰抑制剂诱导的细胞周期阻滞 | 第67-68页 |
| 1.7 用高浓度组蛋白去乙酰化酶抑制剂TSA处理玉米幼苗会导致幼苗叶片细胞中组蛋白乙酰化升高和活性氧的积累 | 第68-70页 |
| 1.8 程序性细胞死亡相关基因和组蛋白乙酰化相关基因在热压力下的转录情况 | 第70-74页 |
| 1.9 热压力诱导的程序性细胞死亡过程中活性氧分子和表观修饰的调控 | 第74-75页 |
| 2 热压力下的核糖体DNA表观调控 | 第75-83页 |
| 2.1 热压力导致核仁裂解 | 第75-77页 |
| 2.2 热压力诱导45S rDNA脱浓缩 | 第77-78页 |
| 2.3 热压力激活45S rDNA转录 | 第78-81页 |
| 2.4 组蛋白修饰调控45S rDNA转录起始 | 第81-83页 |
| 3 TNFα诱导的细胞凋亡过程中的表观修饰变化 | 第83-88页 |
| 3.1 TNFα诱导的细胞凋亡过程中伴随着基因组DNA高甲基化 | 第83-85页 |
| 3.2 5-AC特异性抑制TNFα诱导的细胞凋亡 | 第85-88页 |
| 讨论 | 第88-95页 |
| 1 热压力诱导的玉米幼苗叶片程序性细胞死亡过程中的表观调控 | 第88-90页 |
| 2 45S rDNA在热压力下的表观调控 | 第90-92页 |
| 3 程序性细胞死亡过程中的表观调控 | 第92-93页 |
| 4 展望 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-109页 |
| 在读期间发表文章 | 第109-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
