| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第15-40页 |
| 1.1 顺式二羟基生物分子 | 第15-16页 |
| 1.2 顺式二羟基生物分子的富集方法 | 第16-22页 |
| 1.2.1 凝集素亲和法 | 第16-17页 |
| 1.2.2 亲水相互作用色谱法 | 第17页 |
| 1.2.3 肼化学法 | 第17-18页 |
| 1.2.4 离子交换法 | 第18页 |
| 1.2.5 免疫亲和法 | 第18-19页 |
| 1.2.6 硼亲和法 | 第19-22页 |
| 1.2.6.1 原理 | 第19-20页 |
| 1.2.6.2 发展与应用 | 第20-22页 |
| 1.3 顺式二羟基生物分子的分离方法 | 第22-25页 |
| 1.3.1 高效液相色谱法 | 第22-23页 |
| 1.3.2 毛细管电泳 | 第23-25页 |
| 1.3.2.1 毛细管区带电泳 | 第23页 |
| 1.3.2.2 胶束毛细管电动色谱 | 第23-24页 |
| 1.3.2.3 毛细管凝胶电泳 | 第24-25页 |
| 1.3.2.4 毛细管等电聚焦 | 第25页 |
| 1.4 顺式二羟基生物分子的检测方法 | 第25-27页 |
| 1.4.1 紫外-可见吸收检测法 | 第25-26页 |
| 1.4.2 激光诱导荧光检测法 | 第26页 |
| 1.4.3 生物质谱检测法 | 第26-27页 |
| 1.5 本论文的工作 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-40页 |
| 第二章 免疫磁珠萃取与毛细管电泳深紫外激光诱导荧光的联用方法分析促红细胞生成素 | 第40-59页 |
| 2.1 引言 | 第40-42页 |
| 2.2 实验部分 | 第42-44页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第42-43页 |
| 2.2.2 免疫磁珠萃取 | 第43页 |
| 2.2.3 EPO样品的预处理 | 第43-44页 |
| 2.2.4 尿样的预处理 | 第44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 2.3.1 深紫外激光诱导荧光检测法 | 第44-45页 |
| 2.3.2 免疫亲和萃取法 | 第45-46页 |
| 2.3.3 免疫萃取与解吸条件的优化 | 第46-48页 |
| 2.3.3.1 洗脱溶液与洗脱时间的优化 | 第47页 |
| 2.3.3.2 萃取温度的优化 | 第47-48页 |
| 2.3.3.3 萃取时间的优化 | 第48页 |
| 2.3.3.4 萃取pH和离子强度的优化 | 第48页 |
| 2.3.3.5 不同来源抗体的比较 | 第48页 |
| 2.3.4 方法的检测限与重现性 | 第48-49页 |
| 2.3.5 萃取注射液中的EPO | 第49-50页 |
| 2.3.6 尿样基质对EPO萃取的影响 | 第50-51页 |
| 2.3.7 与现有方法比较 | 第51-52页 |
| 2.4 本章小结 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 第三章 硼亲和辅助的胶束毛细管电动色谱法分离分析顺式二羟基化合物 | 第59-81页 |
| 3.1 引言 | 第59-61页 |
| 3.2 实验部分 | 第61-62页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第61页 |
| 3.2.2 样品制备 | 第61-62页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第62-74页 |
| 3.3.1 核苷与硼酸的结合常数 | 第62页 |
| 3.3.2 不同背景电解质与分离模式的比较 | 第62-64页 |
| 3.3.3 取代硼酸的结构与浓度的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.4 CTAB浓度的影响 | 第65-66页 |
| 3.3.5 背景电解质pH的影响 | 第66-67页 |
| 3.3.6 毛细管温度的影响 | 第67-69页 |
| 3.3.7 分离电压的影响 | 第69-70页 |
| 3.3.8 尿素的影响 | 第70-72页 |
| 3.3.9 方法验证 | 第72页 |
| 3.3.10 BAA-MEKC应用于尿样中核苷的分离分析 | 第72-74页 |
| 3.4 本章小结 | 第74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 第四章 树枝状高分子辅助的硼亲和磁性纳米材料选择性富集痕量糖蛋白 | 第81-105页 |
| 4.1 引言 | 第81-82页 |
| 4.2 实验部分 | 第82-87页 |
| 4.2.1 试剂与药品 | 第83页 |
| 4.2.2 仪器 | 第83-84页 |
| 4.2.3 制备dPBA-MNPs | 第84-85页 |
| 4.2.4 考察dPBA-MNPs的选择性 | 第85-86页 |
| 4.2.5 吸附等温线的测定 | 第86页 |
| 4.2.6 Scatchard分析 | 第86页 |
| 4.2.7 测定dPBA-MNPs对HRP的最低萃取浓度 | 第86页 |
| 4.2.8 单糖对dPBA-MNPs萃取HRP的干扰 | 第86-87页 |
| 4.2.9 考察dPBA-MNPs对糖蛋白的选择性富集 | 第87页 |
| 4.2.10 dPBA-MNPs对唾液中糖蛋白的选择性富集 | 第87页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第87-99页 |
| 4.3.1 材料表征 | 第87-89页 |
| 4.3.2 dPBA-MNPs的选择性 | 第89页 |
| 4.3.3 dPBA-MNPs的吸附等温线与Scatchard分析 | 第89-92页 |
| 4.3.4 dPBA-MNPs对HRP的最低抓取浓度 | 第92-93页 |
| 4.3.5 单糖对dPBA-MNPs抓取糖蛋白的干扰 | 第93-94页 |
| 4.3.6 dPBA-MNPs对糖蛋白的选择性富集 | 第94-95页 |
| 4.3.7 dPBA-MNPs的萃取与解吸速度 | 第95-96页 |
| 4.3.8 dPBA-MNPs的重复利用 | 第96-97页 |
| 4.3.9 dPBA-MNPs (G5.0)与HRP的亲和力 | 第97-98页 |
| 4.3.10 dPBA-MNPs对唾液中糖蛋白的选择性富集 | 第98-99页 |
| 4.4 本章小结 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-105页 |
| 本论文的创新点 | 第105-106页 |
| 发表论文及专利 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
