摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
缩略词表 | 第12-14页 |
前言 | 第14-15页 |
第一部分 大鼠原代肝星状细胞激活过程中 Sulf1 基因表达的变化 | 第15-32页 |
(一) 实验材料 | 第16-20页 |
1. 实验动物 | 第16页 |
2. 动物实验耗材 | 第16页 |
3. 主要的实验试剂 | 第16-18页 |
4. 主要试剂的配制方法 | 第18-19页 |
5. 主要实验仪器 | 第19-20页 |
(二) 实验方法 | 第20-26页 |
1. 原代肝星状细胞的分离 | 第20-21页 |
2. 细胞培养方法 | 第21页 |
3. Western Blot 检测原代肝星状细胞激活过程中 α-SMA、GFAP、Desmin、F4/80 的表达 | 第21-24页 |
4. 检测原代肝星状细胞激活过程中 Sulf-1 基因表达水平的变化 | 第24-26页 |
(三) 实验结果 | 第26-28页 |
(四) 实验讨论 | 第28-32页 |
1. 原代肝星状细胞的分离方法 | 第28-30页 |
2. 原代肝星状细胞的鉴定 | 第30页 |
3. 大鼠原代肝星状细胞激活过程中 Sulf-1 基因的表达水平下降 | 第30-32页 |
第二部分 重组TGFβ1因子对肝星状细胞系LX2和HSCT6增殖能力的影响 | 第32-37页 |
(一) 实验材料 | 第32-33页 |
1. 细胞系 | 第32页 |
2. 主要试剂 | 第32页 |
3. 主要器材 | 第32页 |
4. 主要溶剂及其配制 | 第32-33页 |
(二) 实验方法 | 第33-34页 |
(三) 实验结果 | 第34-35页 |
(四) 实验讨论 | 第35-37页 |
第三部分 肝星状细胞系中的 hSulf1 基因表达的干预 | 第37-48页 |
(一) 实验材料 | 第37-39页 |
1. 病毒载体和质粒载体 | 第37-38页 |
2. 所需主要试剂 | 第38页 |
3. 主要实验仪器 | 第38页 |
4. 主要溶剂的配制 | 第38-39页 |
(二) 实验方法 | 第39-44页 |
(三) 实验结果 | 第44-47页 |
(四) 实验讨论 | 第47-48页 |
第四部分 腺病毒介导的 hSulf1 基因高表达对肝星状细胞系 LX2 和HSCT6 激活的抑制作用 | 第48-62页 |
(一) 主要实验材料 | 第48-49页 |
(二) 实验方法 | 第49-52页 |
(三) 实验结果与实验讨论 | 第52-62页 |
全文小结 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-70页 |
综述 | 第70-81页 |
参考文献 | 第74-81页 |
硕士期间发表的论文 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |