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青娥方对破骨细胞性骨吸收调控作用的实验研究

中文摘要第1-10页
Abstract第10-15页
前言第15-18页
第一部分 青娥方对去卵巢模鼠骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKL的影响第18-40页
 1. 材料和方法第18-27页
   ·实验材料第18-20页
     ·实验药物第18页
     ·实验动物第18页
     ·实验试剂第18-19页
     ·实验仪器第19-20页
   ·实验方法第20-27页
     ·实验动物分组与造模第20页
     ·药物干预与取材第20-21页
     ·指标检测第21-27页
       ·骨密度测定第21页
       ·血清E_2含量检测第21页
       ·血清TRACP活力检测第21-22页
       ·骨组织HE染色及图像分析第22页
       ·骨骼生物力学性能检测第22页
       ·骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKLmRNA检测第22-25页
       ·骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKL蛋白检测第25-27页
 2. 统计学处理第27页
 3. 实验结果第27-34页
   ·一般情况观察第27页
   ·术后12周大鼠PMOP模型鉴定第27页
   ·骨密度结果第27页
   ·骨组织形态学结果第27-28页
   ·骨生物力学结果第28-29页
   ·血清E_2结果第29页
   ·血清TRACP活力结果第29-30页
   ·骨组织MMP-2、9、13、RANKLmRNA和蛋白含量结果第30页
   ·骨组织OPGmRNA和蛋白含量结果第30-34页
 4. 讨论第34-40页
   ·去卵巢骨质疏松大鼠模型的建立第34-35页
   ·青娥方对去卵巢骨质疏松模鼠破骨细胞性骨吸收的影响第35-40页
第二部分 青娥方含药血清对体外培养破骨细胞的分化和骨吸收活性的响第40-51页
 1. 材料和方法第40-44页
   ·实验材料第40-41页
     ·实验药物第40页
     ·实验动物第40页
     ·实验试剂第40页
     ·实验仪器第40-41页
     ·主要试剂的配制第41页
       ·含10%胎牛血清的DMEM培养液的配制第41页
       ·细胞因子M-CSF和RANKL的配制第41页
       ·含药血清的制备第41页
     ·骨片的制备与处理第41页
   ·实验方法第41-44页
     ·破骨细胞培养第41-42页
     ·实验分组第42页
       ·青娥方含药血清对RAW264.7细胞诱导分化影响的分组第42页
       ·青娥方含药血清对成熟破骨细胞骨吸收功能影响的分组第42页
     ·破骨细胞的鉴定第42页
       ·活体细胞的动态观察第42页
       ·TRACP染色第42页
     ·破骨细胞计数第42-43页
     ·骨吸收陷窝观察第43页
     ·细胞上清液中TRACP活力检测第43页
     ·细胞中PU.I、Mitf、NFATcl、TRACP、RANK、MMP-9mRNA检测第43-44页
 2. 统计学处理第44页
 3. 实验结果第44-49页
   ·破骨细胞鉴定第44页
     ·活体细胞的动态观察第44页
     ·TRACP染色第44页
     ·骨吸收陷窝甲苯胺蓝染色第44页
   ·诱导培养2d、4d、6d时破骨样细胞计数结果第44-45页
   ·诱导培养2d、4d、6d时细胞中PU.1、Mitf、NFATcl mRNA表达结果第45-46页
   ·诱导培养2d、4d、6d时细胞上清液中TRACP活力结果第46-47页
   ·培养8d、9d、10d时骨吸收陷窝计数结果第47页
   ·培养8d、9d、10d时细胞中TRACP、RANK、MMP-9mRNA表达结果第47-48页
   ·培养8d、9d、10d时细胞上清液中TRACP活力结果第48-49页
 4. 讨论第49-51页
   ·破骨细胞体外培养体系的建立和鉴定第49页
   ·青娥方含药血清对RAW264.7细胞诱导分化的影响第49页
   ·青娥方含药血清对成熟破骨细胞骨吸收功能的影响第49-51页
结论第51-52页
参考文献第52-55页
附录第55-65页
致谢第65-66页
文献综述第66-70页
 参考文献第68-70页
作者简介第70页

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