中文摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-15页 |
前言 | 第15-18页 |
第一部分 青娥方对去卵巢模鼠骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKL的影响 | 第18-40页 |
1. 材料和方法 | 第18-27页 |
·实验材料 | 第18-20页 |
·实验药物 | 第18页 |
·实验动物 | 第18页 |
·实验试剂 | 第18-19页 |
·实验仪器 | 第19-20页 |
·实验方法 | 第20-27页 |
·实验动物分组与造模 | 第20页 |
·药物干预与取材 | 第20-21页 |
·指标检测 | 第21-27页 |
·骨密度测定 | 第21页 |
·血清E_2含量检测 | 第21页 |
·血清TRACP活力检测 | 第21-22页 |
·骨组织HE染色及图像分析 | 第22页 |
·骨骼生物力学性能检测 | 第22页 |
·骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKLmRNA检测 | 第22-25页 |
·骨组织MMP-2、9、13、OPG、RANKL蛋白检测 | 第25-27页 |
2. 统计学处理 | 第27页 |
3. 实验结果 | 第27-34页 |
·一般情况观察 | 第27页 |
·术后12周大鼠PMOP模型鉴定 | 第27页 |
·骨密度结果 | 第27页 |
·骨组织形态学结果 | 第27-28页 |
·骨生物力学结果 | 第28-29页 |
·血清E_2结果 | 第29页 |
·血清TRACP活力结果 | 第29-30页 |
·骨组织MMP-2、9、13、RANKLmRNA和蛋白含量结果 | 第30页 |
·骨组织OPGmRNA和蛋白含量结果 | 第30-34页 |
4. 讨论 | 第34-40页 |
·去卵巢骨质疏松大鼠模型的建立 | 第34-35页 |
·青娥方对去卵巢骨质疏松模鼠破骨细胞性骨吸收的影响 | 第35-40页 |
第二部分 青娥方含药血清对体外培养破骨细胞的分化和骨吸收活性的响 | 第40-51页 |
1. 材料和方法 | 第40-44页 |
·实验材料 | 第40-41页 |
·实验药物 | 第40页 |
·实验动物 | 第40页 |
·实验试剂 | 第40页 |
·实验仪器 | 第40-41页 |
·主要试剂的配制 | 第41页 |
·含10%胎牛血清的DMEM培养液的配制 | 第41页 |
·细胞因子M-CSF和RANKL的配制 | 第41页 |
·含药血清的制备 | 第41页 |
·骨片的制备与处理 | 第41页 |
·实验方法 | 第41-44页 |
·破骨细胞培养 | 第41-42页 |
·实验分组 | 第42页 |
·青娥方含药血清对RAW264.7细胞诱导分化影响的分组 | 第42页 |
·青娥方含药血清对成熟破骨细胞骨吸收功能影响的分组 | 第42页 |
·破骨细胞的鉴定 | 第42页 |
·活体细胞的动态观察 | 第42页 |
·TRACP染色 | 第42页 |
·破骨细胞计数 | 第42-43页 |
·骨吸收陷窝观察 | 第43页 |
·细胞上清液中TRACP活力检测 | 第43页 |
·细胞中PU.I、Mitf、NFATcl、TRACP、RANK、MMP-9mRNA检测 | 第43-44页 |
2. 统计学处理 | 第44页 |
3. 实验结果 | 第44-49页 |
·破骨细胞鉴定 | 第44页 |
·活体细胞的动态观察 | 第44页 |
·TRACP染色 | 第44页 |
·骨吸收陷窝甲苯胺蓝染色 | 第44页 |
·诱导培养2d、4d、6d时破骨样细胞计数结果 | 第44-45页 |
·诱导培养2d、4d、6d时细胞中PU.1、Mitf、NFATcl mRNA表达结果 | 第45-46页 |
·诱导培养2d、4d、6d时细胞上清液中TRACP活力结果 | 第46-47页 |
·培养8d、9d、10d时骨吸收陷窝计数结果 | 第47页 |
·培养8d、9d、10d时细胞中TRACP、RANK、MMP-9mRNA表达结果 | 第47-48页 |
·培养8d、9d、10d时细胞上清液中TRACP活力结果 | 第48-49页 |
4. 讨论 | 第49-51页 |
·破骨细胞体外培养体系的建立和鉴定 | 第49页 |
·青娥方含药血清对RAW264.7细胞诱导分化的影响 | 第49页 |
·青娥方含药血清对成熟破骨细胞骨吸收功能的影响 | 第49-51页 |
结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-55页 |
附录 | 第55-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
文献综述 | 第66-70页 |
参考文献 | 第68-70页 |
作者简介 | 第70页 |