摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-15页 |
第一部分 CP 对睾丸间质瘤细胞毒性机制研究 | 第15-67页 |
第一章 前言 | 第15-29页 |
1 食品污染物 CP 概述 | 第15-18页 |
·CP 形成 | 第15-16页 |
·CP 风险评估 | 第16-18页 |
2 CP 的毒性研究进展 | 第18-24页 |
·3-MCPD 毒性作用 | 第19-22页 |
·1,3-DCP 毒性作用 | 第22-24页 |
3 CP 生殖毒性研究现状 | 第24-26页 |
·3-MCPD 生殖毒性 | 第24-25页 |
·1,3-DCP 生殖毒性 | 第25-26页 |
4 睾丸间质细胞概述 | 第26-28页 |
·睾丸间质细胞简介 | 第26页 |
·睾酮合成机制 | 第26-27页 |
·睾酮调控机制 | 第27页 |
·大鼠睾丸间质瘤细胞 R2C | 第27-28页 |
5 技术路线 | 第28-29页 |
第二章 材料与方法 | 第29-46页 |
1 仪器与材料 | 第29-34页 |
·仪器 | 第29-30页 |
·材料与试剂 | 第30-31页 |
·试剂溶液配制(所有溶液配制用水均为超纯水) | 第31-34页 |
2 方法 | 第34-46页 |
·MTT 实验检测 CP 对 R2C 细胞的生长影响 | 第34-35页 |
·SCGE 法观察 CP 对 R2C 细胞的 DNA 损伤作用 | 第35-36页 |
·RIA 测定 CP 对 R2C 细胞孕酮合成的影响 | 第36-37页 |
·FCM 和激光共聚焦观察 CP 对 R2C 细胞 MMP 的影响 | 第37-38页 |
·QRT-PCR 检测 CP 对 R2C 细胞孕酮合成关键基因 StAR、P450scc 和 3β-HSD 的影响 | 第38-41页 |
·Western blot 测定 CP 对 R2C 细胞孕酮合成关键基因 StAR 和 3β-HSD 蛋白表达的影响 | 第41-44页 |
·荧光酶标仪检测 CP 对 R2C 的 ROS 水平影响 | 第44页 |
·CL 检测 CP 对 R2C 的 cAMP 水平影响 | 第44-45页 |
·统计学分析 | 第45-46页 |
第三章 实验结果 | 第46-62页 |
1 CP 对 R2C 细胞的生长抑制作用和试验浓度筛选 | 第46-47页 |
2 CP 对 R2C 细胞的 DNA 损伤作用 | 第47-50页 |
3 CP 对 R2C 细胞形态的改变 | 第50-52页 |
4 CP 对 R2C 细胞孕酮合成的影响 | 第52-53页 |
5 CP 对 R2C 细胞孕酮合成的关键因子 StAR、P450scc 和 3β-HSD 表达的影响 | 第53-57页 |
·CP 对 R2C 细胞 StAR、P450scc 和 3β-HSD mRNA 表达的影响 | 第53-56页 |
·CP 对 R2C 细胞 StAR 和 3β-HSD 蛋白表达的影响 | 第56-57页 |
6 CP 对 R2C 细胞 MMP 的影响 | 第57-60页 |
7 CP 对 R2C 细胞 ROS 的影响 | 第60-61页 |
8 CP 对 R2C 细胞 cAMP 的影响 | 第61-62页 |
第四章 讨论 | 第62-67页 |
1 CP 对 R2C 细胞的毒性作用 | 第62-63页 |
2 CP 抑制 StAR 蛋白表达降低孕酮合成 | 第63-65页 |
3 CP 抑制 cAMP 和 MMP 降低孕酮合成 | 第65-67页 |
第二部分 CP 对小鼠体外受精及早期胚胎发育的影响 | 第67-79页 |
第一章 前言 | 第67-68页 |
第二章 材料与方法 | 第68-75页 |
1 动物选取与饲养 | 第68页 |
2 仪器与材料 | 第68-70页 |
·仪器 | 第68页 |
·材料与试剂 | 第68-69页 |
·试剂溶液配制 | 第69-70页 |
3 方法 | 第70-75页 |
·激素刺激雌鼠促排卵 | 第70页 |
·HTF 培养皿和卵裂培养皿的准备 | 第70页 |
·取精 | 第70-71页 |
·取卵 | 第71页 |
·体外受精 | 第71-72页 |
·早期胚胎体外培养 | 第72页 |
·统计学分析 | 第72-75页 |
第三章 实验结果 | 第75-78页 |
1 3-MCPD 对小鼠体外受精率的影响 | 第75-76页 |
2 3-MCPD 对小鼠体外受精早期胚胎发育的影响 | 第76-78页 |
第四章 讨论 | 第78-79页 |
结论 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-91页 |
缩词简表 | 第91-93页 |
在学期间发表论文清单 | 第93-94页 |
致谢 | 第94页 |