| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1 差异表达基因的研究进展 | 第11-18页 |
| ·热激蛋白基因 | 第11-14页 |
| ·HSP基因的分类 | 第11-13页 |
| ·HSP70s的结构特征 | 第13页 |
| ·热激蛋白基因的功能 | 第13-14页 |
| ·几丁质酶基因的研究进展 | 第14-15页 |
| ·几丁质酶基因的分类 | 第14页 |
| ·几丁质酶基因的功能 | 第14-15页 |
| ·捕光色素蛋白复合体基因 | 第15-16页 |
| ·小分子热激蛋白基因 | 第16-17页 |
| ·金属硫蛋白基因 | 第17-18页 |
| 2 研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 第二章 热处理过程中沙梨植株相关基因的动态表达与病毒含量变化之间的关系 | 第19-28页 |
| 1 研究材料和试剂 | 第19-20页 |
| ·研究材料 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| 2 研究方法 | 第20-23页 |
| ·恒温热处理 | 第20页 |
| ·总RNA的提取 | 第20页 |
| ·荧光定量(Real-time)PCR和RT-PCR检测 | 第20-23页 |
| ·引物的设计与合成 | 第21页 |
| ·RT | 第21-22页 |
| ·半定量RT-PCR | 第22-23页 |
| ·Real-time PCR | 第23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-26页 |
| ·恒温热处理不同时间ASGV的含量变化 | 第23-24页 |
| ·恒温热处理不同时间段差异表达基因的表达动态 | 第24-26页 |
| ·受热处理诱导的3个基因在热处理过程中的表达动态 | 第24-25页 |
| ·热处理诱导沙梨下调表达基因的动态分析 | 第25-26页 |
| 4 结论与讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 沙梨热激蛋白和几丁质酶基因的全长克隆及序列分析 | 第28-45页 |
| 1 研究材料与方法 | 第28-34页 |
| ·研究材料与试剂 | 第28页 |
| ·核酸的提取 | 第28-29页 |
| ·DNA的提取 | 第28-29页 |
| ·总RNA的提取及RT | 第29页 |
| ·PCR的扩增 | 第29-33页 |
| ·HSP基因的PCR扩增 | 第29-31页 |
| ·EC基因的PCR扩增 | 第31-33页 |
| ·PCR产物的回收克隆和测序 | 第33-34页 |
| ·PCR产物的回收 | 第33页 |
| ·连接 | 第33页 |
| ·转化大肠杆菌感受态细胞 | 第33-34页 |
| ·克隆测序 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-43页 |
| ·沙梨植株HSP70基因的全长克隆 | 第34-35页 |
| ·沙梨"黄花"植株HSP70遗传进化分析 | 第35-38页 |
| ·进化树分析 | 第35-37页 |
| ·HSP基因的分子生物学特征 | 第37-38页 |
| ·沙梨植株EC基因的全长克隆 | 第38-40页 |
| ·沙梨"黄花"植株EC基因遗传进化分析 | 第40-43页 |
| ·进化树分析 | 第40-41页 |
| ·EC基因的分子生物学特征分析 | 第41-43页 |
| 3 结论与讨论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 附录:主要试剂及溶液的配制 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
