| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-24页 |
| ·南极冰藻 | 第12-14页 |
| ·南极冰藻生长环境 | 第12页 |
| ·极地微生物的适冷机制 | 第12-13页 |
| ·南极冰藻研究现状 | 第13页 |
| ·南极冰藻研究意义 | 第13-14页 |
| ·Dead-Box RNA 解旋酶 | 第14-19页 |
| ·RNA 解旋酶 | 第14-15页 |
| ·解旋酶的作用机制 | 第15-17页 |
| ·Dead-box RNA 解旋酶研究现状 | 第17-18页 |
| ·Dead-box RNA 解旋酶研究意义 | 第18-19页 |
| ·卡拉胶与卡拉胶酶 | 第19-21页 |
| ·卡拉胶的结构与来源 | 第19-21页 |
| ·卡拉胶酶的来源与种类 | 第21页 |
| ·卡拉胶酶的作用条件 | 第21页 |
| ·课题研究目的及意义 | 第21-24页 |
| 第2章 南极冰藻 Chlamydomonas sp.ICE-L RNA 解旋酶 CiDDX5 的基因特征及其表达分析 | 第24-36页 |
| ·材料与方法 | 第25-28页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-28页 |
| ·结果与分析 | 第28-34页 |
| ·南极衣藻 ICE-L 总 RNA 的检测 | 第28-29页 |
| ·DEAD-box RNA 解旋酶基因的序列分析 | 第29-30页 |
| ·DEAD-box RNA 解旋酶基因的蛋白质三级结构预测分析 | 第30页 |
| ·DEAD-box RNA 解旋酶基因的系统发育分析 | 第30-31页 |
| ·CiDDX5 氨基酸序列同源性分析 | 第31-32页 |
| ·DEAD-box RNA 解旋酶基因定量表达分析 | 第32-34页 |
| ·讨论与小结 | 第34-36页 |
| 第3章 南极冰藻 Chlamydomonas sp. ICE-L CiDDX5 基因原核表达 | 第36-46页 |
| ·材料与方法 | 第36-41页 |
| ·实验材料 | 第36-38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-43页 |
| ·ICE-L CiDDX5 基因的克隆 | 第41-42页 |
| ·pET-28a(+)-CiDDX5 的构建 | 第42页 |
| ·ICE-L CiDDX5 基因克隆到 pET-28 载体中的表达 | 第42-43页 |
| ·讨论与小结 | 第43-46页 |
| 第4章 印尼巴厘海域产卡拉胶海藻生物多样性分析 | 第46-52页 |
| ·材料与方法 | 第46-48页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-49页 |
| ·PCR 产物和测序 | 第48页 |
| ·分子系统树 | 第48-49页 |
| ·讨论与小结 | 第49-52页 |
| 第5章 卡帕藻中产卡拉胶酶活性菌的分离筛选 | 第52-64页 |
| ·材料与方法 | 第52-56页 |
| ·实验材料 | 第52-53页 |
| ·实验方法 | 第53-56页 |
| ·结果与分析 | 第56-62页 |
| ·卡拉胶菌株的筛选 | 第56页 |
| ·酶活力的测定 | 第56-57页 |
| ·发酵条件的优化 | 第57-58页 |
| ·培养基的优化 | 第58-62页 |
| ·讨论与小结 | 第62-64页 |
| 第6章 结论与展望 | 第64-68页 |
| ·结论 | 第64-65页 |
| ·展望 | 第65-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 在学期间主要科研成果 | 第78页 |
