| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstracts | 第4-11页 |
| 1 引言 | 第11-20页 |
| ·植物花药开裂及JA 代谢途径的研究概况 | 第11-15页 |
| ·花药开裂结构机理的研究概况 | 第11-12页 |
| ·JA 的生物合成途径及其参与植物生理过程的研究概况 | 第12-14页 |
| ·JA 途径参与植物花药开裂调控的研究概况 | 第14-15页 |
| ·小麦光温敏雄性不育系的研究概况 | 第15-16页 |
| ·光温敏雄性不育小麦概述 | 第15页 |
| ·光温敏雄性不育小麦研究史的概况 | 第15-16页 |
| ·基因功能验证主要方法介绍 | 第16-18页 |
| ·农杆菌介导转化法 | 第16-17页 |
| ·基因枪法 | 第17-18页 |
| ·花粉管通道法 | 第18页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第18-20页 |
| 2 不同浓度外源 MeJA 处理 BS 系列及常规品种活体小穗 | 第20-28页 |
| ·实验材料 | 第20-21页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·试剂配方 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21页 |
| ·种子春化及种植 | 第21页 |
| ·取材及处理 | 第21页 |
| ·开裂率及结实率统计 | 第21页 |
| ·统计分析 | 第21页 |
| ·结果与分析 | 第21-27页 |
| ·对花药开裂率的影响 | 第21-23页 |
| ·对结实率的影响 | 第23-26页 |
| ·不同浓度处理间的差异显著性分析 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-28页 |
| 3 最佳浓度外源 MEJA 处理 BS366 及京冬8 活体小穗 | 第28-43页 |
| ·实验材料 | 第28-29页 |
| ·植物取材 | 第28页 |
| ·主要试剂及器材 | 第28-29页 |
| ·试剂配方 | 第29页 |
| ·主要专业软件 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-33页 |
| ·基因特异引物设计 | 第29-30页 |
| ·活体小穗的 MeJA 外源处理 | 第30页 |
| ·药裂形态观察及碘染 | 第30页 |
| ·开裂率及结实率考察 | 第30-31页 |
| ·各处理材料 RNA 的提取(Trizol 法) | 第31页 |
| ·RNA 质量检测 | 第31页 |
| ·RNA 浓度测定及第一链cDNA 的合成(semi-quantitative RT) | 第31-32页 |
| ·半定量 RT-PCR 循环数的确定 | 第32页 |
| ·内参基因 GAPDH 及JA 途径各基因的半定量 RT-PCR | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-41页 |
| ·各处理材料的药裂形态及碘染情况 | 第33-35页 |
| ·各处理材料开裂率及结实率统计 | 第35-36页 |
| ·RNA 质量分析 | 第36-37页 |
| ·RNA 浓度测定及纯度分析结果 | 第37-38页 |
| ·半定量 RT-PCR 循环数确定结果 | 第38页 |
| ·内参基因 GAPDH 半定量 RT-PCR 表达分析结果 | 第38-39页 |
| ·各处理材料 JA 途径各相关基因的半定量RT-PCR 表达分析 | 第39-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| 4 TAAOC 和 TAOPR 基因的基因枪法功能验证 | 第43-58页 |
| ·TAAOC 和 TAOPR 单子叶植物转基因表达载体的构建 | 第43-49页 |
| ·试验材料 | 第43页 |
| ·试验方法 | 第43-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-49页 |
| ·讨论 | 第49页 |
| ·TAAOC 和 TAOPR 基因转化小麦幼胚 | 第49-58页 |
| ·试验材料与试剂配方 | 第49-50页 |
| ·实验过程与方法 | 第50-54页 |
| ·结果与分析 | 第54-57页 |
| ·讨论 | 第57-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 作者简介 | 第65页 |
